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BONNER ZOOLOGISCHE BEITRAGE
Herausgegeben vom Zoologischen Forschungsinstitut und Museum Alexander Koenig Bonn
Schriftleitung Rainer Hutterer
Band 47, Hefte 1—4, 1997/98
ISSN 0006-7172
Redaktionelle Mitarbeit: H. von Issendorff
Vom Band 47, 1997/98, erschienen
Hefte 1—2 (p. 1—192) 7. Oktober 1997 Hefte 3—4 (p. 193—448) 30. September 1998
Zoologisches Forschungsinstitut und Museum Alexander Koenig Adenauerallee 160, 53113 Bonn, Germany Druck: JFeCARTHAUS, Bonn ISSN 0006—7172
Inhalt des 47. Bandes
Allspach, A.; siehe Taiti
Arita, Y.; siehe Gorbunov
Bóhme, W.: A note on the gender of the genus Podarcis (Sauria: Lacertidae).....
Bosch, J.; siehe De la Riva
Bouton,; siehe Seehausen
Catzeflis, F. M.; siehe Jenkins
Chen, S.-L.; siehe Matsui
Claussen, C.: Die europäischen Arten der Cheilosia alpina-Gruppe (Diptera, Syrphi- TEE) 2 550 0.0 0.0.0.0.0 00 oe Le a ee A
Contadini, L.; siehe Galleni
Dégallier, N.: Coleoptera Histeridae Hetaeriinae: description de nouveaux taxons, desiemationzdeslectotypeszet MOLES! CaxONOMIGues nn. een.
DelaRiva,I., R. Marquez & J. Bosch: Description of the advertisement calls of some South American Hylidae (Amphibia: Anura): taxonomic and methodological SITSSTWENER. sd ll NEN OA AOS
Disney, R. H. L.: Post-eclosion heterochrony in the maturation of the adult females oraemitopaloustily (Diptera, PRoridae).. iio. dao oe es
Disney, R. H. L.: Recognition of a sibling species of the Australian Eutermiphora abdoninalsaltea (Diptera: Phoridae) Mier. ae a a o na oo
Fahr, J.: Die Sandlaufkáfer (Coleoptera: Cicindelidae) des Comoé-Nationalparks, Elfenbeinküste: Faunistik, Zoogeographie und Okologie ..............ooo.o.o.o..
Ferrara, F.; siehe Taiti
Frynta, D.; siehe Vohralík
Binschrerl2@occinellidae (Coleoptera) aus Rwanda....................22.2......
Galleni, L., R. Stanyon, L. Contadini & A. Tellini: Biogeographical and karyological data of the Microtus savii group (Rodentia, Arvicolidae) in Italy ..
Goodman,S. M., P. D. Jenkins & O. Langrand: Exceptional records of Micro- gale species (Insectivora: Tenrecidae) in vertebrate food remalnS ...............
Gorbunov, O. G. & Y. Arita: Review of the genus Paradoxecia Hampson, 1919 WepidopteraSesiidas MAI E E a da ile
Haacke, W.: Systematics and biogeography of the southern African scincine genus Nana cortas iiReptillas SCIMNCIAL) as o nen en
Hershkovitz, P.: Report on some sigmodontine rodents collected in southeastern Brazil with description of a new genus and six new Species ...........o..o.oo...
Jenkins, P, M. Ruedi € F. M. Catzeflis: A biochemical and morphological investigation of Suncus dayi (Dobson, 1888) and discussion of relationships in Suneus, Crocidura, and Sylvisorex (Insectivora: Soricidae)....................
Jenkins, P. D.; siehe Goodman
Jordan, T.: Tersilochus curvator Horstmann und Tersilochus sp. n. (Ichneumonidae, Tersilochinae), neue Parasitoiden der an Birken minierenden Trugmotten (Lepidoptera, ERICA Eh ee RR RA Se EIERN SE
Karner, M.: A new species of Notolaemus Lefkovitch from Rwanda (Coleoptera: BTemophlocidae)e Be Bar an LE en ee
Kirejtshuk, A. G.: On the evolution of anthophilous Nitidulidae (Coleoptera) in FroprealgandssubiTOpIcalatesionse. an ee aan:
Langrand, O.; siehe Goodman
Lue, K.Y..; siehe Matsui
Márquez, R.; siehe De la Riva
Matsui, M., S.-L. Chen € K.Y. Lue: Advertisement call characteristics of a Tai- Naneserorcenttrec iO wm NNACOPNOLUS PIS INAMU nen
Melber, A. &H. Pohl: Erster Nachweis einer Strepsipterenparasitierung bei Wanzen ineNirteleuropar(inseeta, Strepsipteraret Heteroptera) a. e
Naijt, J.; siehe Weiner
Naumann CAVE Zu Gedenkentan Hans Kumerloeve o... oo
187
381
345
175
77
87
321
13
2
135
39
139
193
ZN
411
95
111
165
69
189
Pohl, H.; siehe Melber
Ruedi, M.; siehe Jenkins
Seehausen, O. & N. Bouton: The community of rock-dwelling cichlids in Lake Vietolla. a ae a A NN
Shilenkov, V. G.: New and little known Nebrina (Epinebriola) from the eastern Nepal Himalayas: (Coleoptera; Carabidae) =. sae eee eee
Sofianidou, T. S.; siehe Vohralik
Spatenka, K.: Neue Glasflügler (Lepidoptera, Sesiidae) aus dem Pamir und dem Hindukusch».. 00 sie cid a Sis RRS BES) OO ee ee eee
Spatenka, K.: Neue Glasflügler-Arten und Unterarten aus Europa und der Türkei (Sesiidae, Lepidoptera). 2.0 0... 0 ee eee ee cee
Stanyon, R.; siehe Galleni
Taiti, S., F Ferrara & A. Allspach: On three species of Periscyphis Gerstaecker, 1873 from Kenya, Sudan and Oman (Crustacea: Isopoda: Oniscidea) ..........
Tanasevitch, A. V.: Gorbothorax n. gen., a new linyphiid spider genus from the Nepal Himalayas (Arachnida, Araneae, Linyphiidae)]........................
Tanasevitch, A. V.: New Oedothorax Bertkau, 1883, from Nepal (Arachnida, Araneas,. Linyphiidae)) A ao On eee
Tellini, A.; siehe Galleni
Tilbury, C.: Two new chameleons (Sauria: Chamaeleonidae) from isolated Afro- montane forests in Sudan and Ethiopia ©...) 2 eee eee
Vohralik, V., T.S. Sofianidou & D. Frynta: Reproduction in Mus macedonicus (Mammalia: Rodentia) in the Balkansz. .. .. sac cerca eee eee
Weiner, W. & J. Naijt: Collembola Poduromorpha from the Magallanes Province (Chile): o... 0 aa re a
301
313
43
283
Verzeichnis der neuen Taxa im 47. Band
Mammalia: Muridae
EN OAOREMyStaSENnS SPIHIErShkovitzr ne anne san 220 IBrueenattersomiusne Sg. Hershkovitz sau... ooo eee ee be eee ea 22 Ianlcepattersonius.albinasus.n. sp: Hershkovitz2...2. 222.2... o 55-440" 235 Brucepattersontus eniserufescensn. sp. Hershkoyitz2....2.2.......2.....2...... 233 Bileenattersonius,ieniventris n. sp. Hershkovitz? ooo 232 IBrüecepattersonius. Soricinus'n. sp. HershkovitZ ooo. os 232 Oxaimyeienus:) caparaoem. sp. Hershkovitz o o 244 Sauria: Scincidae ivphlacontias punctatissimus brainein. ssp: Haacke......................... 150 Mynhlaeontiasırüudebeckin. sp. Haack: 20.0 2. oe Bo ee ec cee ee he eee eee 155 Sauria: Chamaeleonidae Chamaeleo (Irioceros) balebicornutus n. sp. Tilbury..:..........2............ 294 ChamacleoWrioceros) controstratum mW. sp. Elbury a mn.n.nn..n... 297 Lepidoptera: Sesiidae BEIMOCClIONA OISIail Ss SPALEMKA G2 65.5 os E ee we es ee 36 Bemocciaenaratecina ms sp: Spatenka ooo eo ns eee ce ee eee tee eens 33 Benibeciaspashtunan> Sp) Spatenka ae hehe ce ee he 31 Bembecia pavicevici dobrovskyi n. ssp. Spatenka.:....................-+-... 48 IBembecianpetersemin. sp. SpatenKa's........ 4052005 - ss. senses A E 46 IBembeeiansyze]oVi Kkappadocican. ssp. Spatenkat a o 50 @namaespheeiankauttı n.ısp. Spatenkan 0. me. es ee o e 53 CGhanaespnecia mudjahida Ww. sp. Spatenka ooo 38 Chamaesphecia taurica n. sp. Spatenka .............. e N AP AS 55 @namaesphecia weidenhofjerin. sp. Spatenka ao oo oe 39 Divenashapecia intermeaia m. sp: Spatenka oca co 52 OT AUOXCEIUMUCICNSIS Me Sp) Gorbunov &-Atita oo 65 Paradoxecia viemnamica n. sp. Gorbunov & Arita...2...-.....--.++-+-+--++-:: 62 Syzansphheeiasherain: Sp. Spatenka 2. .4....c- nose o cece soe: cate ee at 51 Synanthedon andrenaformis tenuicingulata n. ssp. Spatenka .................. 44 Synanthedon stomoxiformis riefenstahli n. ssp. Spatenka.................--.- 43 Diptera: Phoridae ENERO WatSOn! M. Sp: Disney a oes nest ene nee. 90 Diptera: Syrphidae Chenosiagsubpictipennis 1. sp. Claussen.............. te e e ee ee ene eee 405 Coleoptera: Carabidae INebzasschawalleri ns sps Shilenkov. das 314 INebnwantonejelaensisuns sp. Shilenkov ee... neuen. 316 Coleoptera: Coccinellidae Alnidentaammiehleim. sp. Kürsehi ..)5 2 «2% 20. 0 a Ae nee ren na 26 Ianılachnakapiceoeulatan. sp. Fürsch a 24 Naipilachnazcarapacolan. sp. Eürsch. a o dl eel ee so 26 Iipiluchnanconsperzatain. sp. Rürsch. 4. 552-2 5-5 + se ose ee Sees setae es 24 INephUSA(SIGIS) rugulipennis a. sp. Eürsch 250058566 ee os) ees: 18 INCOSE (SIGIS)) Drevipulosus Tl. Sp) Fürsch. 32 9-45-54 2 msn. 18 ORANGES ACIIS Ms O ee 20 PSCUAOSGVIMRUS brunneusın. sp. Rürsch 54.452. 2m .eoae ener eee dees os oes 20 SCOLOSGVINNUS EI QOnIDUOSUS Ne SP: HUISChe semanas sae ees] eee see es. 22 SCOLOSGVININUS MAXIMUS Ml. A ey. een 22. Seumnusı(2ullus)zwandensisin. Sp. Rürsch a... scannen: 16 TEISTARRO SEU a ne ko hc ae ee nen. 20 Coleoptera: Histeridae ESTOS CIN ADE SA NS OR 352
Colonides collesicianensis m= ssp) Déeallicm nen. 357
Neocolonides ng. Désalliera 23. A A A eee 362
MNeoeolonides.hoy.denin. sp: Desi 364 Troglosternus neoeciionis nsps Desallerzzrr. re EL eee 272 Coleoptera: Laemophloeidae Notolaemus wagneri.n. Sp: Karel... ds iota REL Cee 95 Coleoptera: Nitidulidae Brouthina ne os Kirejtshuk. 00 tt E ores OO eC Ee 129 Brounthina aequalisin..sp., Kit eee 129 Claplothorax n.-sg. Kirejtshuk ... . «chs osteo DCL 128 Mandipetes n.: se: Kirejtshuk: 0 3. ug Sr Se 122 Planennipolus.n. se. Kirejtshuk 0... 80 eee Cee 128 Propetes (Propetes) aquılus n. sp Kirejtshuk 2 oe 118 Propetes (Mandipetes) intritus n. sp. Kirejtshuk............. STAs x RN 122 'Propetes (Mandipetes) longipes MAS eee 122 Propetes (Propetes) seychellensis Mp reg eee 120 Uroearpolus.n:.58. Klrejtshuks „ur: o 128 Arachnida: Linyphiidae Gorbothorax 1. 2£.-Tanasevich..... its 0 oe 421 Gorbothorax comatus mn. sp. Tanasevich...2.2. 2 eee 225 Gorbothorax conicusin. sp. Tanasevichi.. 2.12... es 226 Gorbothorax setifer Mn. spy Tanasevich..... 2... re PIDA) Oedothorax angelus ns sp. Tanasevich, 2.2 2 eee 433 Oedothorax clypeelum n. sp. Tanasevich ....... A RE wal ops ay is cad oe 436 Oedothorax coronatus n. sp. Tanasevic 2. 2 ee 432 Oedothorax Jalciferusn. sp. Tanasevich .. 3... 55 ou eee eee 440 Oedothorax malearmatus n. sp. Tanasevich . 222.2 ne 440 Oedothorax modestusn. sp. Tanasevich.. .... 2. oe eee 438 Oedothorax savigniformis n. sp. Tanasevich?. 4..6. 4... ee 439 Oedothorax sexoculorum n. sp. Tanasevich 2... 2.2.2. 2.202 oe eee ee 434 Oedothorax simplicithorax a. sp. Lanas ca 1.0 06 eee 437 Oedothorax tholusus'n. sp. VWanasevich. ... eo 435 Oedothorax unsibbus n. sp. Vanasevich 22 hee 428 Isopoda: Oniscidea Periscyphis albomarginatus n. sp. Taiti, Ferrara & Allspach................... 6 Periscyphis sudanensis n. sp. Taiti, Ferrara & Allspaci oe 1 Collembola: Hypogastruridae Triacanthella vogeli n. sp. Weiner LENIN 102
Collembola: Brachystomellidae Brachystomellides navarinensis n. sp. Weiner & Naijt .............o.o.oooo.o.o.o.. 105
Herausgegeben vom Zoologischen Forschungsinstitut und Museum Alexander Koenig Bonn
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IR LIBRA
Band 47, Hefte 172, 197 ISSN 00067172
Bonner zoologische Beiträge
Herausgeber und Verlag: Zoologisches Forschungsinstitut und Museum Alexander Koenig, Bonn.
Schriftleitung: Dr. Rainer Hutterer, Zoologisches Forschungsinstitut und Museum Alexander Koenig, Adenauerallee 160, D-53113 Bonn.
Erscheinungsweise und Bezug: Die Zeitschrift erscheint vierteljährlich zum Preis von 22,50 DM je Heft bzw. 90,— DM je Band einschließlich Versandspesen. Korrespondenz über Abonne- ments, Kauf oder Tausch bitte richten an die Bibliothek, Zoologisches Forschungsinstitut und Museum Alexander Koenig, Adenauerallee 160, D-53113 Bonn.
Manuskripte und Besprechungsexemplare: Einsendung an die Schriftleitung erbeten. Manu- skriptrichtlinien sind am Ende dieses Heftes abgedruckt.
Druck: JFe CARTHAUS, Bonn.
On three species of Periscyphis Gerstaecker, 1873 from Kenya, Sudan and Oman (Crustacea: Isopoda: Oniscidea)
Stefano Taiti, Franco Ferrara & Andreas Allspach
Abstract. Periscyphis brunneus Budde-Lund, 1912 from Kenya is redescribed on the basis of the type-material and new material examined, and the lectotype is designated. Two new species, P sudanensis from Sudan and P albomarginatus from Oman, are described. All species presently included in Periscyphis are listed with their distributions.
Key words. Crustacea, Isopoda, Oniscidea, Eubelidae, Periscyphis, new species, Kenya, Sudan, Oman.
The genus Periscyphis Gerstaecker, 1873 belongs to the family Eubelidae which represents the most important fraction of the Oniscidean fauna of tropical Africa and the Arabian Peninsula. The genus is characterized by the pereonite 1 with the posterior corners entire (1.e. without a schisma) and no ventral lobes or teeth, antennal flagellum of two articles, inner branch of the maxillule with two penicils, exopods of pleopods 1 and 2 with monospiracular covered lungs. All species of Periscyphis populate arid or semiarid areas.
After Omer-Cooper’s (1926) comprehensive revision, many new species have been ascribed to Periscyphis (Arcangeli 1929; 1934; 1940; Barnard 1940; 1941; Ferrara 1972; 1973; 1974; Schmölzer 1974; Ferrara & Taiti 1982; 1986; 1988; 1996; Taiti & Ferrara 1989; 1991; Erhard € Schmalfuss in press) so that to date the genus has included with certainty 36 species distributed in northeastern Africa, Israel and the Arabian Peninsula.
In this contribution one poorly-known species, Periscyphis brunneus Budde-Lund, 1912 from Kenya, is redescribed and two new species from Sudan and Oman are described, bringing the number of species in the genus to 38 (Table 1).
Abbreviations: MZUF — Museo Zoologico “La Specola” dell’Universita, Firenze; NRM — Naturhistoriska Riksmuseet, Stockholm; ONHM — Oman Natural History Museum, Muscat; SMF — Senckenberg-Museum, Frankfurt/Main.
Periscyphis brunneus Budde-Lund, 1912, Figs 1, 2
Periscyphis brunnea Budde-Lund, 1912 (in Lónnberg & Budde-Lund, 1912): 7, Fig. 5. Periscyphis brunneus; Omer-Cooper, 1926: 398; Paulian de Félice, 1945: 342; Ferrara & Taiti, 1979: 155%
Lectotype (here designated): 9, Kenya, Njoro, N of Guaso Nyiri river about 1°N lat., under the sheaths of palm leaf-stalks, leg. E. Lónnberg, 17. II. 1911, NRM 2648. Paralectotype: 1 Q, same data as lectotype.
Material examined: 4 70,2 Q 9, Kenya, Kora National Reserve, 00 °02’S—38 °37’E, leg. R. C. Davis, 2. II. 1984, MZUF 1579.
Redescription: Maximum dimensions: &, 6x2.5 mm; 9, 6.5x 2.8 mm. Brown with the usual pale muscle spots; uropods pale (red in vivo?). Dorsum smooth with inconspicuous
2 Se Tantızerral
D
Fig. 1: Periscyphis brunneus Budde-Lund, 1912, or from Kora National Reserve: A, adult spe- cimen, lateral view; B, cephalon, dorsal view; C, cephalon, frontal view; D, right side of pereo- nites 1 and 2, dorsal view; E, pleonite 5, telson and uropods.
pointed scale-spines. Eye with about 25 ommatidia. Cephalon with broadly rounded lateral lobes; no frontal margin; interocular line visible only at sides; profrons slightly bulbous in the middle. Pereonite 1 with lateral margin slightly thickened; a shallow sulcus arcuatus only in the anterior third; posterior corners rounded, distinctly protruding backwards. Pereonites 2—7 with posterior corners progressively less protruding backwards. Telson with distal part narrow, triangular with narrowly rounded apex. Antenna short, reaching rear margin of pereonite 2 when pushed back; flagellar articles subequal in length. Uropodal protopod with convex outer margin and posterior margin indented, a small glandular area near postero- lateral corner; small exopod distinctly protruding backwards.
Male: Pereopods 1—3 carpus with a brush of pointed spines. Pereopod 7 without special modifications; ischium with straight sternal margin. Pleopod 1 exopod with quadrangular medial part, distal margin with a row of strong spines; endopod with a thickset distal part
New species of Periscyphis 3
Fig. 2: Periscyphis brunneus Budde-Lund, 1912, & from Kora National Reserve: A, antenna; B, pereopod 1; C, pereopod 7; D, pleopod 1; E, pleopod 2.
and bilobed apex, outer lobe with some small rounded scales, inner lobe triangular with two spines. Pleopod 2 as in Fig. 2E.
Remarks: Since no illustrations, except for the apex of the maxilliped, were provided by Budde-Lund (1912) in the description of Periscyphis brunneus, this species is redescribed here and its diagnostic characters are illustrated. It is characterized by the cephalon with no frontal line and distinct interocular line on the vertex, the pereonite 1 with the lateral margin slightly thickened and the sulcus arcuatus present only in the anterior third, and by the male pleopod 1 endopod with a bilobed apex. The colour pattern (brown with pale uropods) is also a useful distinguishing character.
4 S. Taiti et al.
Fig. 3: Periscyphis sudanensis n. sp., 2 from Erkowit: A, adult specimen, lateral view. © from Erkowit: B, cephalon, dorsal view; C, cephalon, frontal view; D, left side of pereonites 1 and 2, dorsal view; E, pleonite 5, telson and uropods; F, antenna.
Periscyphis sudanensis n. sp., Figs 3, 4 Periscyphis trivialis; Vandel 1964: 735, Fig. 111.
Holotype: ©, Sudan, village Erkowit at Mount Erkowit, ca. 50 km SW of Suakin, 1200 m, leg. A. Allspach, 2. III. 1987, SMF 22681.
Paratypes:2 00,1 Q, 2 juvs, same data as holotype, SMF 22682; 1 or, 1 9, same data, MZUF 4778.
Additional material examined: 3 oo, 4 99, Sudan, Sanganeb Island, N of
Port Sudan, at lighthouse, leg. V. Neumann, 31. III. 1991, SMF 22683; 1 ©, 1 Q, same data, MZUF 4779.
New species of Periscyphis 5)
Fig. 4: Periscyphis sudanensis n. sp., © from Erkowit: A, pereopod 1; B, pereopod 7; C, pleo- pod 1; D, pleopod 2. © from Sanganeb Is.: E, pleopod 1 exopod.
Description: Maximum dimensions: ©, 8x 3.2 mm; 9, 9x3.5 mm. Light brown with posterior margin of pereonites, pleon and telson darker; epimera of pereonites and pleonites and uropods pale. Dorsum smooth with inconspicuous pointed scale-spines. Eye with about 21 ommatidia. Cephalon similar to the preceding species, i. e. with broadly rounded lateral lobes, no frontal margin, interocular line visible only at sides and profrons slightly bulbous in the middle. Pereonite 1 with lateral margin slightly thickened; a shallow sulcus arcuatus only in the anterior third; posterior corners rounded, protruding backwards. Pereonites 2—7 with posterior corners slightly protruding backwards. Telson with distal part triangular and rounded apex, reaching tips of uropodal protopods. Antenna reaching middle of pereonite 2
6 S. Taiti et al.
when pushed back; first flagellar article almost 3/2 as long as second. Uropodal protopod large, with convex outer margin, a large indentation on posterior margin and a wide transverse elandular area near postero-lateral corner; small exopod distinctly protruding backwards. Male: Pereopods 1—3 carpus with a brush of recurved and pointed spines. Pereopods 2—4 ischium and merus with some small verrucae on sternal margin. Pereopod 7 ischium with a large depression on distal rostral surface, sternal margin almost straight; merus proximally with a small rounded tubercle near tergal margin and a group of four spines near sternal margin. Pleopod 1 exopod subtriangular, with broadly rounded posterior margin equipped with short spines; endopod with distal part pointed and bent outward. In specimens from Sanganeb Island the pleopod 1 exopod is subtrapezoidal (cf. Fig. 4E). Pleopod 2 as in Fig. 4D.
Etymology: The name refers to Sudan where the specimens were collected.
Remarks: In the structure of the cephalon (without frontal margin) and pereonite 1 (with the sulcus arcuatus present only in the anterior third of the segment) Periscyphis sudanensis is similar to P cavernicolus, P. abyssinicus, P jannonei, P. verhoeffi, P somaliensis and P. brunneus. It is readily distinguished from all these species by the male pereopod 7 merus with a distinct tubercle on the rostral surface and a basal group of spines near the sternal margin, and by the different shape of the telson. Moreover, it differs from P abyssinicus and P jannonei in the absence of a rectangular protrusion on the sternal margin of the male pereopod 7 ischium; from P verhoeffi in the absence of a large lamellar lobe on the tergal margin of the male pereopod 7 merus; from P brunneus, P cavernicolus and P somaliensis in the different shape of the apex of the male pleopod 1 endopod.
In the presence of a meral tubercle on the male pereopod 7, PR sudanensis corresponds to P vittatus and P insularis. It is easily distinguished from the former by the presence of the sulcus arcuatus (absent in P vittatus) on pereonite 1 and the telson reaching the posterior margin of the uropodal protopod (it is distinctly shorter in P vittatus) and from the latter essentially by the structure of the telson and uropods (compare Fig. 3E and Fig. 14 in Ferrara & Taiti 1989).
In the specimens from Sanganeb Is. the male pleopod 1 exopod is morphologically different from that of the specimens from Erkowit (compare Fig. 4C and Fig. 4E), while all the other characters correspond. With the material at our disposal we are not able to say whether this difference is within the intraspecific variability or, instead, it is indicative of distinct taxa. For the time being, we prefer to include the specimens from Sanganeb Is. in the new species without considering them as paratypes. Vandel (1964: 735) recorded P trivialis from Suakin, Sudan. However, from his illustration of the male pleopod 1 exopod, it is clear that the specimens examined by Vandel do not belong to P trivialis but to P sudanensis, having affinity particularly with the specimens from Sanganeb Is. (compare Fig. 111 in Vandel 1964 and Fig. 4B).
Periscyphis albomarginatus n. sp., Figs 5, 6
Holotype: ©, Oman, Masirah Island, near S tip, 20°12’ N—58°40’E, 1100 m, under shrub on mountain side, leg. M. D. Gallagher, 5. VI. 1991, ONHM. Paratype: ©, same data as holotype, MZUF 4780.
Description: Maximum dimensions: 14 x 8 mm. Grey-brown with posterior part of cephalon, epimera of pereon and pleon, tip of telson and uropods pale; pereonites with a large pale spot in the middle and two pale paramedian spots in correspondence to the muscle insertions. Dorsum smooth with inconspicuous pointed scale-spines. Eye with 23—24 ommatidia. Cephalon with broadly rounded lateral lobes; frontal margin interrupted in the middle; interocular line reaching middle of the eyes; profrons bulbous in the middle. Pereonite 1 with a conspicuous lateral thickening and a deep narrow sulcus arcuatus in the anterior half; posterior margin slightly concave at sides; posterior corners broadly rounded. Telson with distal part triangular and rounded apex, slightly surpassing tips of uropods. Antenna long with first flagellar article almost twice as long as first. Uropodal protopod subquadrangular with posterior margin indented and small glandular area near exopod insertion; exopods minute. Pereopods 1—3 with a brush of recurved pointed spines on carpus and, progressively
New species of Periscyphis 7)
Fig. 5: Periscyphis albomarginatus n. sp., ©: A, adult specimen, lateral view; B, cephalon, dorsal view; C, cephalon, frontal view; D, right side of pereonites 1 and 2, dorsal view; E, pleonite 5, telson and uropods; F, antenna.
. more reduced, on merus. Pereopods 1—4 ischium and merus with some small verrucae on sternal margin. Pereopod 7 ischium with concave sternal margin and distally with a large depression on rostral surface; carpus flattened, recurved and slightly enlarged, with a distal lobe on caudal surface equipped with three strong spines. Pleopod 1 exopod with rounded distal margin; endopod with pointed apex slightly bent outwards. Pleopod 2 as in Fig. 6D.
Etymology: L. albus = white + marginatus = having a margin. The name refers to the characteristic colour pattern (in alcohol) with a large pale stripe all around the body.
8 SeTaltızeralk
Fig. 6: Periscyphis albomarginatus n. sp., ©: A, pereopod 1; B, pereopod 7; C, pleopod 1; D, pleopod 2.
Remarks: The new species belongs to the granai-group, characterized by the cephalon with large rounded lateral lobes which continue in a frontal margin, entire or interrupted in the middle, large quadrangular uropodal protopod, and male pereopod 7 with sexual modifica- tions on the ischium and carpus. This group includes P granai, P latissimus, P. arabicus, P barnardi, P omanensis, P buettikeri, P insularis and P minor. In the frontal margin inter- rupted in the middle, P albomarginatus corresponds to P buettikeri and P insularis (all the other species in the group have a continuous frontal margin) and it is readily distinguished from both by the telson with rounded, instead of acute, apex surpassing the posterior margin
New species of Periscyphis 9
of the uropodal protopod. It also differs from P buettikeri in the sulcus arcuatus anteriorly not bent inwards, the regularly convex lateral margin of pereonite 1 (it has a distinct depression in P buettikeri) and the carpus of the male pereopod 7 with the tergal margin much less convex; and from P insularis in the lack of a tubercle on the merus of the male pereopod 7.
Table 1: Periscyphis species* and their distributions.
1) Periscyphis abyssinicus Ferrara, 1972 Ethiopia
2) Periscyphis albescens (Budde-Lund, 1885) Egypt and Sudan 3) Periscyphis albomarginatus n. sp. Oman
4) Periscyphis albus Erhard & Schmalfuss, in press Israel and Egypt
5) Periscyphis arabicus Barnard, 1941 Saudi Arabia and Yemen 6) Periscyphis barnardi Ferrara & Taiti, 1986 Yemen
7) Periscyphis besi Barnard, 1941 Yemen
8) Periscyphis brunneus Budde-Lund, 1912 Kenya
9) Periscyphis buettikeri Ferrara & Taiti, 1986 Saudi Arabia 10) Periscyphis cavernicolus Omer-Cooper, 1926 Ethiopia 11) Periscyphis civilis Budde-Lund, 1908 Somalia and Kenya
Periscyphis convexus (Budde-Lund, 1885)
Egypt, Sudan, Djibouti and Tanzania (?)
13) Periscyphis felix Taiti & Ferrara, 1989 Saudi Arabia
14) Periscyphis granai Arcangeli, 1929 Eritrea
15) Periscyphis insularis Ferrara & Taiti, 1988 Oman
16) Periscyphis jannonei Arcangeli, 1940 Sudan and Ethiopia 17) Periscyphis lanzai Ferrara, 1973 Somalia
18) Periscyphis latissimus Omer-Cooper, 1926 Eritrea
19) Periscyphis laticarpus Taiti & Ferrara, 1989 Saudi Arabia and Kuwait 20) Periscyphis libycus Arcangeli, 1934 Libya
21) Periscyphis limbatus Omer-Cooper, 1926 Kenya
22) Periscyphis merolobatus Ferrara & Taiti, 1982 Eritrea
23) Periscyphis minor Ferrara & Taiti, 1996 Yemen
24) Periscyphis nigricans Omer-Cooper, 1926 Ethiopia
25) Periscyphis omanensis Taiti & Ferrara, 1991 Oman
26) Periscyphis pulcher Budde-Lund, 1898 Tanzania
27) Periscyphis rubroantennatus Ferrara, 1974 Somalia
28) Periscyphis ruficauda Budde-Lund, 1908 Somalia and Kenya 29) Periscyphis somaliensis Ferrara, 1973 Somalia
30) Periscyphis strouhali Arcangeli, 1929 Eritrea
31) Periscyphis subtransversus Omer-Cooper, 1926 Egypt (?)
32) Periscyphis sudanensis n. sp. Sudan
33) Periscyphis trivialis Gerstaecker, 1873 Ethiopia, Somalia, Kenya and Tanzania
34) Periscyphis tschadensis Schmölzer, 1974 Chad
35) Periscyphis undulatus Omer-Cooper, 1926 Ethiopia
36) Periscyphis vandeli Ferrara, 1973 Somalia
37) Periscyphis verhoeffi Arcangeli, 1929 Ethiopia and Kenya
* Four species described in Periscyphis (P kalongensis Arcangeli, 1950 from Zaire, P montanus Schmölzer, 1974, P pallidus Schmölzer,
Periscyphis vittatus Omer-Cooper, 1926
Saudi Arabia, United Arab Emirates, Oman, Yemen, Eritrea, Djibouti, Somalia and Mozambique
1974 from Kenya, and P niger Schmölzer, 1974 from Tanzania) certainly do not belong to this genus.
10 Ss: Taitı eral:
Acknowledgements
We wish to express our sincerest thanks to Dr. L. Sandberg (NRM) for the loan of the type- specimens of Periscyphis brunneus, to Dr. M. D. Gallagher (ONHM) who entrusted us with the specimens of the new species P albomarginatus, and to Dr. V. Neumann (SMF) who collected specimens of the new species P sudanensis during his marine biological stay at Sanganeb Is., Sudan.
Zusammenfassung
Periscyphis brunneus Budde-Lund, 1912 von Kenia wird auf der Basis des Typenmaterials und neuer Exemplare aus Kenia wiederbeschrieben und der Lectotypus bestimmt. Zwei neue Arten, P sudanensis aus Sudan und P albomarginatus aus Oman, werden beschrieben. Die bis heute bekannten Arten der Gattung Periscyphis werden mit ihrer Verbreitung tabellarisch zusammengestellt.
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New species of Periscyphis 11
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Stefano Taiti and Franco Ferrara, Centro di Studio per la Faunistica ed Ecologia Tropicali del Consiglio Nazionale delle Ricerche, Via Romana 17, 50125 Firenze, Italy. — Andreas Allspach, Wetzlarer Straße 50, 35398 Gießen, Germany.
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Bd. 47 S. 13—29 Bonn, September 1997
Coccinellidae (Coleoptera) aus Rwanda Helmut Fürsch
Abstract. Coccinellids from Rwanda, collected by Thomas Wagner by fogging rainforest trees with pyrethrum, are listed and the following new species are described and figured: Afidenta muehlei, Boschalis wagneri, Epilachna carapacola, Epilachna conspergata, Nephus brevipilosus, Nephus rugulipennis, Ortalia gracilis, Pseudoscymnus brunneus, Scotoscymnus glabripilosus, Scotoscymnus maximus, Scymnus rwandensis, Telsimia striata. New synonyms: Scymnus luniferus Sicard is a younger synonym of Scymnus usam- baricus Weise and Scymnus (Nephus) circumcinctus Mader of Nephus (Sidis) burgeoni Mader.
Key words. Coccinellidae, Africa, Rwanda, taxonomy, ecology, collecting methods.
Einleitung
Thomas Wagner erforschte im Oktober 1993 im Rahmen seiner Dissertation über Biodiversität in tropischen Waldökosystemen die Arthropodenfauna Rwandas und des benachbarten Ost-Zaire. Dabei wandte er neben Hand- und Kescherfängen eine neue Methode an: Er benebelte für die entsprechenden Phytozönosen dominierende Bäume mit einem Nebelgerát ’Swingfog SN-50’ und 1%iger Pyrethrumsuspension. Die ausgewählten Bäume waren nicht höher als 8 m, da vom Boden aus gearbeitet wurde und höhere Bäume nicht vollständig benebelt werden konnten. Mit dieser Methode wurden jeweils mehrere Bäume behandelt und die herunterfallenden Ar- thropoden in Trichtern aufgefangen. Damit war es erstmals möglich, den Arthropo- denbestand eines Baumes vollständig zu erfassen. Die Nummern der Einzelbäume sind hinter dem Artnamen der gefundenen Coccinelliden vermerkt. Wagners Vor- gehensweise erbrachte eine einzigartige Zahl neuer Arten, wie das seit den ersten Zeiten der Erforschung der Coccinellidenfauna nicht mehr der Fall war. Zur Abrun- dung wurden hier auch Sammelergebnisse von Hans Mühle aus Nyakabuye mit- bearbeitet.
Material und Methoden
Das Material von Thomas Wagner, zusammen mit den Aufsammlungen von Hans Mühle (Fürsch 1991) bieten eine Gesamtübersicht der Coccinellidae Rwandas unter Berücksichtigung der Arbeiten Maders (1941, 1950 und 1954) über die Exploration du Parc National Albert (heute Parc National des Virunga in Zaire und Parc National des Volcans in Rwanda) mit Ergänzungen von Fürsch (1991). In diesem Zusammenhang sei auch auf Nummelin & Fürsch - (1992) verwiesen. Das Material befindet sich im Museum Koenig Bonn (ZFMK) sowie in der Sammlung Fürsch (CF in ZSM). Vergleichsmaterial stammt auch aus dem Zoologischen Museum der Humboldt-Universität Berlin (MHB), dem Institut Royal des Sciences Naturelles, Bruxelle (IRSN), dem Zoolog. Museum Helsinki (ZMH), dem British Museum of Natural History, London (BMNH), dem Museum Georg Frey, München (MGF), der Zoologischen Staatssammlung München (ZSM), dem Musée National d’Histoire Naturelle, Paris, sowie dem Musée Royal de |’ Afrique Centrale, Tervuren (MRAC).
14 HPEUES CA
20 km nach Butembo
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Foret des Nyungwe
Karte der Fundgebiete. Schraffiert: Trockenwaldsavanne; gerastert: Regen- und Nebelwald- gebiete (im Parc National des Virunga (ehemals Parc National Albert) sind grofe Savannen- gebiete enthalten). Gezeichnet nach verschiedenen Vorlagen, vor allem von Th. Wagner.
Alle Genitalorgane sind nach Mikropráparaten in Hoyers Gemisch mit Zeichenapparat in vergleichbaren Maßstäben skizziert. Die beigegebene Karte soll einen Überblick über die Lage der Fundorte geben.
Ergebnisse
Der besondere Wert der Ausbeute Wagners liegt nicht nur in der für heutige Zeiten ungewöhnlichen Zahl neuer Arten, sondern in der Zuordnungsmöglichkeit zu bestimmten Ökotypen. Zunächst werden die Coccinelliden der verschiedenen Wald- typen aufgelistet und dann die neuen Arten beschrieben. Ziffern hinter dem Art- namen bedeuten Nummer des untersuchten Baumes. Wo diese fehlt, bezieht sich die Angabe auf Kescher- oder Handfang in dieser Phytozönose.
1. Trockenwald, südl. des Parc National de Il’ Akagera bei Ibanda Makera. Baumart: Lannea fulva (Anacardiaceae).
Boschalis wagneri Fürsch 4
Exochomus troberti concavus Fürsch 1, 2
Nephus castaneicolor Sicard 1
Nephus rugulipennis sp. n.
Ortalia argillacea Mulsant 1, 2, 3, 4
Ortalia gracilis sp. n.
Ortalia pallens Mulsant 1
Platynaspis capicola Crotch
Platynaspis kollari Mulsant
Scymnus (Pullus) rwandensis sp. n. 4
Scymnus (Pullus) usambaricus Weise 4
Coccinellidae aus Rwanda 15
Scymnus levaillanti Mulsant Scymnus nummelini Fürsch 4 Scymnus pruinosus Weise 4
2. Galeriewald südl. des Parc National de Il’ Akagera bei Ibanda Makera. Baumart Teclea nobilis (Rutaceae).
Chilocorus distigma Klug 10
Declivitata amoenula (Gerstäcker) 1, 3, 8 Nephus castaneicolor Sicard 5
Nephus microglobosus Fürsch 8
Nephus rugulipennis sp. n.
Scymnus (Pullus) rwandensis sp. n. 3, 4, 5, 6, 8, 9 Scymnus (Pullus) thiollierei didymus Sicard 3, 10 Scymnus kibonotensis Weise 7
Scymnus levaillanti Mulsant 1, 3, 5, 6, 7, 8, 9 10 Scymnus nummelini Fürsch 6, 7
Scymnus pruinosus Weise 5, 6, 9
Telsimia inornata Casey 6
3. Nebelwald Foret de Nyungwe und Cyamudongo. Baumart Carapa grandiflora (Meliaceae).
Aulis korschefskyi Mader 3, 12
Bambusicola centralis (Sicard) 1 (bei Karengera) Boschalis striata sp. n. 17
Boschalis wagneri Fürsch 1, 9, 11, 12, 17 Cheilomenes aurora (Gerstäcker)
Chnootriba similis Thunberg 2 (bei Kamiranzovu) Epilachna aestimabilis (Mader) 3
Epilachna carapacola sp. n. 3, 17
Epilachna conspergata sp. n. 1, 2, (bei Kamiranzovu) Epilachna karisimbica (Weise)
Epilachna korschefskyi (Mader)
Epilachna loveni (Weise) 1
Epilachna novemdecemguttata (Weise) 1
Epilachna paradoxa (Mader)
Epilachna tenelloides Fürsch 1 (bei Karengera) Epilachna zuluensis Crotch
Exochomus troberti concavus Fürsch 2 (bei Kamiranzovu) Henosepilachna annulata (Kolbe) (bei Karengera) Henosepilachna biplagiata (Kolbe)
Henosepilachna humerosa (Weise) 13 Henosepilachna kaesebergi (Weise)
Henosepilachna lucifera (Arrow)
Lotis neglecta Mulsant 2 (bei Kamiranzovu)
Nephus brevipilosus sp. n. 1, 9, 12
Nephus circumcinctus (Mader) 2 (bei Kamiranzovu) Pseudoscymnus brunneus sp. n. 4, 7, 11, 12 Scotoscymnus glabripilosus sp. n. 1, 2, 4, 7, 9, 12, 17 Scotoscymnus maximus sp. n. 3, 4, 9, 11, 12, 17 Scymnus (Pullus) severus Weise 2 Scymnus (Pullus) thiollierei didymus Sicard 11 Scymnus (Pullus) usambaricus Weise 1, 3, 4, 7, 9, 11, 12, 17 Scymnus kibonotensis Weise
Scymnus nummelini Fürsch
Telsimia striata sp. n. 3, 4
Foret de Nyungwe bei Rwrasenkoko. Baumart Hagenia abyssinica (Rosaceae). Scymnus levaillanti Mulsant 2
16 Sol
weiterhin: Chnootriba neglecta Mader auf Alchemilla ellenbeckii Lioadalia sexareata Weise auf Alchemilla ellenbeckii
4. Karisimbi 3000 m, auf Senecio johnstonii.
Epilachna gyldenstolpei (Weise) Lioadalia sexareata Weise
5. Oberer Tieflandregenwald, Forschungsstation Irangi in Ost-Zaire. Cheilomenes aurora (Gerstäcker)
Declivitata inclusa Mulsant
Epilachna aestimabilis (Mader)
Epilachna boops Fürsch (bei Kahuzi Tschiranga)
Epilachna Kaestneri conjugata Fürsch |
Epilachna nigromarginata Fürsch (bei Kahuzi Tschiranga)
Epilachna tenelloides Fürsch
Epilachna tredecimpunctata (Mader)
Henosepilachna mutata fulvicollis Fürsch
Scymnus (Pullus) thiollierei didymus Sicard, auf Carapa grandiflora 11, 51 Stethorus weisei Mader, Mt. Ilimu, 1700 m, auf Carapa grandiflora 11
6. Bemerkenswerte und neue Arten
Scymnus (Pullus) rwandensis sp. n. (Abb. 1-8, 106)
Diagnose: Rundlich, hochgewölbt, gelb, Elytren ringsum geschwärzt, am breitesten an der Basis. Länge: 1.6—1.8 mm; Breite: 1.1—1.3 mm.
Beschreibung: Kopf gelb, fein genetzt und mit Punkten von der Größe der Augenfacetten. Die weißen Haare sind nach der Mitte gerichtet. Pronotum etwas dunkler gelb, auf glattem Untergrund Punkte, die etwas kleiner sind als die Augenfacetten. Ziemlich dicht gelbweiß behaart, hinter den Augen wirbelig, sonst halbaufrecht nach hinten (elytrenwärts) gerichtet. Pronotum verbreitert sich nach hinten und ist nur knapp vor der Basis etwas eingeengt. Scutel- lum schwarz. Elytren in der Mitte gelb, sonst schwarz gerahmt, Elytrenhinterrand gelb wie Abb. 106. Hinter der Mitte am breitesten. Oberfläche fein genetzt und grob punktiert. Schul- terbeule deutlich. Die Elytrenwölbung fällt zum Seitenrand sehr steil, fast senkrecht ab. Seiten- randung nur an der Schulter deutlich. Elytrenbehaarung wie auf Pronotum nach hinten gerichtet.
Differentialdiagnose: Scymnus alluaudi Sicard zum Verwechseln ähnlich, dieser ist auf den Elytren noch etwas deutlicher punktiert. Auf fast glatter Oberfläche stehen die sehr großen Punkte etwa einen Punktdurchmesser voneinander getrennt. Bei S. rwandensis ist die Punktierung „unruhiger“, rugulöser. Einzig sicheres Unterscheidungsmerkmal: Die Sipho- spitze (Abb. 3,4). Sie ist bei S. rwandensis meist doppelt, während sie bei S. alluaudi in einer dünnen Spitze endet und davor ein ,,Stachelpolster“ aufweist (Abb. 17—20). Dieses sieht man zuweilen auch bei S. rwandensis, doch fehlt hier die fein ausgezogene Spitze. Ähnlich ist auch S. usambaricus Weise, doch ist diese Art meist einfarbig braungelb.
Material: Holotypus, männl. Rwanda: Rusumo, Ibanda Makera 10. 1993 auf Teclea nobilis, leg. Th. Wagner. 7 Paratypen mit den gleichen Daten (ZFMK, 2 CF). Weiteres Material: Uganda, W. Prov. Kibale Forest, sweep K 14 5. 1. 1984 leg. N. Nummelin (ZMH, CF).
Scymnus (Pullus) usambaricus Weise (Abb. 10-16)
Scymnus (Pullus) usambaricus Weise, 1897 Dt. ent. Z.: 301. Fürsch 1966: 176. Scymnus (Pullus) luniferus Sicard, 1931: 229, Syn. nov.
Untersuchtes Material: Lectotypus und Paralectotypen von S. usambaricus aus Kwai (MHB), Lectotypus von S. /uniferus, männl. aus den Usambara Mts. bei Amani 20. 2. 1926, “taken by beating coffee foliage” coll. A. H. Ritchie. 2 Paralectotypen mit den gleichen Daten
Coccinellidae aus Rwanda 17
Tafel 1: 1-8: Seymnus rwandensis sp. n.: 1—3 Holotypus: 1 Holotypus (b); 2 Tegmen (c); 3 Siphospitze (c); 4 Siphospitze, Kibale Forest (c). 5—9 Paratypen: 8 Siphonalbasis (c); 9 Abdomen (a). — 10—16: Seymnus usambaricus: 10—12 Cyamodungo; 13 Bulengwa; 14, 15 - Paratypen; Lectotypus von S. /uniferus. — 17—20: Scymnus alluaudi, Siphospitzen: 17 Gar- garo Tana; 18 Kamerun, Nkolentangan; 19 Tanzania, Duluti; 20 id. Usa River. — 21—24 Nephus rugulipennis sp. nov. Holotypus: 24 linke Hälfte des 1. Abdominalsternits mit Femo- rallinie (a). —a—c = Maßstäbe wie auf Tafel 4 unter Abb. 77: a = 1 mm; b, c, = 0,1 mm. Alle Detailabbildungen sind in diesen Maßstäben gezeichnet. Die dargestellten Details sind in der Legende nicht aufgeführt, wenn sie vorher schon erläutert worden sind, um die Übersicht- lichkeit zu erhöhen und Wiederholungen zu vermeiden.
18 HakRünsch
(Festlegung hiermit) (BMNH). Beide Arten unterscheiden sich weder im Habitus noch am Aedeagus voneinander. Kwai liegt bei Amani. Zahlreichen Belege aus Rwanda leg. Th. Wagner (siehe Liste) (ZFMK), Kenya, Tanzania (MHB, ZSM, CF).
Nephus (Sidis) rugulipennis sp. n. (Abb. 21-24, 107)
Etymologie: lat. rugula = kleine Runzel; penna = Flügel(decken).
Diagnose: Langoval, schwarz, nur Kopf (männl.), Mundwerkzeuge, Beine und ein Fleck in der hinteren Hälfte der Elytren gelbrot (Abb. 107 ). Länge 1.55 mm; Breite: 1.0 mm.
Beschreibung: Langoval, fast zylindrisch. Elytrenseiten sehr flach gerundet. Kopf gelbröt- lich, deutlich genetzt, undeutlich punktiert. Mundwerkzeuge und Fühler gelbrötlich. Prono- tum schwarz, seine Vorderwinkel rötlich, auf genetzter Oberfläche fein punktiert (Punkte kleiner als Augenfacetten). Behaarung weiß, ziemlich lang. Elytren schwarz mit braunrotem, verwaschenem Fleck hinter der Mitte wie Abb. 107. Elytrenhinterende schmal rötlich. Die dichte, sehr grobe Punktierung gibt der Oberfläche ein runzeliges Aussehen. Schulterbeule flach, Elytrenwölbung zum Seitenrand sehr steil. Unterseite schwarz mit braunrotem Abdo- men. Aedeagus Abb. 21—23.
Differentialdiagnose: In der Form ähnlich den südafrikanischen Arten N. binaevatus Mulsant und posticesignatus Pope sowie der ostafrikanischen N. stigma Weise. Sie unter- scheiden sich alle am männl. Aedeagus, N. stigma ist auf glatter Elytrenoberfläche stärker punktiert, die Schulterbeule ist kräftiger und die Körperform ist breiter.
Material: Holotypus: männl. Rwanda: Rusumo, Ibanda Makera 10. 1993 leg. Th. Wagner (ZFMK).
Nephus (Sidis) brevipilosus sp. n. (Abb. 25—33, 108)
Etymologie: lat. brevis = kurz; pilosus = behaart, wegen der kurzen, halb aufgerichteten Behaarung.
Diagnose: einfarbig dunkelrot, hochgewólbt und breit gerundet. Lange: 1,8—2.5 mm; Breite: 1.35—1.80 mm.
Beschreibung: Kopf gelb (mánnl.) oder schwarzrot (weibl.), sehr dicht und fein punktiert. Punkte kleiner als Augenfacetten. Sehr dicht gelb behaart. Pronotum rotbraun, auf glatter Oberfläche sehr dicht und fein punktiert, die weißen Haare nach hinten gerichtet. Pronotum- seiten sanft geschwungen, vorne enger als an der Elytrenbasis, fein gerandet. Elytren von der Färbung und Behaarung des Pronotums. Auf fast glatter Oberfläche fein, aber weniger dicht punktiert als Pronotum. Punktzwischenräume größer als ihre Durchmesser. Schulterbeule ziemlich schmal und nicht sehr auffällig. Elytrenwölbung fällt fast senkrecht gegen den fein gekanteten Seitenranad ab. Gleichmäßig gerundet, in der Mitte am breitesten.
Differentialdiagnose: In der Größe nur der nächst verwandten Art Nephus burgeoni Mader sehr ähnlich. N. burgeoni ist aber schwarz gerandet, kann allerdings in seltenen Fällen auch ganz braunrot sein wie die neue Art. Die Behaarung von N. burgeoni ist steifer und vor allem hat diese Art einen kaum auffallenden Humeralcallus. Parameren von N. brevipilosus kürzer als bei N. burgeoni. Der Aedeagus der neuen Art weist gewisse Ähnlichkeit zu dem von N. globulus Fürsch auf, diese westafrikanische Art sieht aber völlig anders aus. Eine große äußere Ähnlichkeit besteht zu Pseudoscymnus brunneus sp. n.
Material: Holotypus: männl. Rwanda: Nyakabuye, Cyamudongo 10. 1993 auf Carapa gran- diflora leg. Th. Wagner (ZFMK). 3 Paratypen mit den gleichen Daten (1 CF); 2 Paratypen: Rwanda: Karengera 1700 m 10. 1993 auf Carapa grandiflora leg. Th. Wagner (1 CF).
Nephus (Sidis) burgeoni (Mader) Scymnus (Nephus) burgeoni Mader, 1950: 64 Scymnus (Nephus) circumcinctus Mader, 1950: 65. syn. nov. Nephus (Bipunctatus) circumcinctus (Mader) — Fürsch 1992: 40. comb. nov. Scymnus (Sidis) longemaculatus Mader, 1950: 59. — Fürsch, 1992: 40.
Coccinellidae aus Rwanda 19
Tafel 2: 25—33: Nephus brevipilosus sp. n.: 25—29 Holotypus; 30—33 Paratypen; 33 Sper- matheca (c). — 34—43 Pseudoscymnus brunneus sp. n. Paratypen: 43 Spermatheca (b).
20 He Bwrsich
Material: Lectotypus und 5 Paralectotypen von N. burgeoni: Rutshuru (MRAC, MGF, CF); Holotypus (männl.) von S. circumcinctus, Volc. Nyamuragira (IRSN), Lectotypus (mánnl.) von S. longemaculatus: Rwanda, Mt Tamira (Náhe Lac Gando) (MRAC) und viel Material aus Rwanda (leg. Th. Wagner, ZFMK, MRAC, MGF, ZSM, CF) enthält sowohl Tiere mit schwar- zer Elytrenumrandung wie auch solche von der Fárbung des N. brevipilosus, also ganz rot- braun. Die von Mader (1950: 65) angegebenen Differentialmerkmale beziehen sich lediglich auf Größe und Färbung der Unterseite und sind variabel. Mit Nephus oblongosignatus (Mul- sant) hat diese Art, entgegen Maders Angaben, nichts zu tun (vgl. Chazeau, Etienne & Fürsch 1974: 273).
Pseudoscymnus brunneus sp. n. (Abb. 34-43, 109)
Etymologie: lat. brunneus = braun.
Diagnose: Breit, hochgewölbt, dunkel rotbraun, zart rötlich an Länge 1.9—2.5 mm; Breite: 1.4—1.9 mm.
Beschreibung: Kopf gelbrot (Holotypus) oder auch rot, dicht und fein punktiert. Punkte kleiner als Augenfacetten. Dicht weiß behaart. Haare im oberen Drittel des Kopfes gegen die Augen gerichtet, davor zur Oberlippe. Pronotum ähnlich dicht punktiert, Oberfläche dazwi- schen fast glatt. Behaarung an den Seiten weiß, in der Mitte rot. Pronotumbreite an der Elytrenbasis am größten, fast gerade nach vorne verengt. Elytrenoberfläche deutlich reticuliert und deutlicher punktiert als Pronotum. Behaarung fein, schütter, rötlich. Schulterbeule breit, nicht besonders deutlich. Zwischen Humeralcallus und Elytrenseitenrand seicht konkav. Elytren hochgewölbt und breit gerundet. Elytrenseitenrand fein gekantet, dunkel. Aedeagus Abb. 34—36, 38, 39, 42.
Differentialdiagnose: Die neue Art ist von allen anderen afrikanischen schon in ihrer Größe und der einheitlich rotbraunen Färbung unterschieden. Die anderen Arten haben wenigstens ein etwas helleres Pronotum. Die männl. Genitalorgane unterscheiden sich von den übrigen Arten (vgl. Fürsch 1990). P brunneus hat allerdings große äußerliche Ähnlichkeit mit der im gleichen Gebiet vorkommenden Nephus brevipilosus sp. n.
Material: Holotypus, männl.: Rwanda: Nyakabuye, Cyamudongo 10. 1993 leg. Th. Wagner (ZFMK). 11 Paratypen mit den gleichen Daten (3 CF).
Ortalia gracilis sp. n. (Abb. 44-47)
Etymologie: lat. gracilis = zierlich, wegen der in dieser Gattung geringen Größe. Diagnose: Ober- und Unterseite einheitlich blaßgelb. Länge: 2.9 mm; Breite: 2.2 mm.
Beschreibung: Kopf auf glatter Oberfläche dicht punktiert. Punkte etwa von der Größe der Augenfacetten. Mandibelspitzen dunkelbraun. Auch auf den Augen weiß behaart. Prono- tum sehr dicht punktiert, vor der Mitte am breitesten, zur Basis fast gerade sehr leicht verengt. Elytren langoval, hinter der wenig deutlichen Schulterbeule am breitesten, dann fast parallel- seitig. Wie auf Pronotum weiß behaart. Punktierung regelmäßig und dicht.
Differentialdiagnose: Sehr ähnlich den Ortalia-Arten, argillacea Mulsant (Abb. 50— 52), ochracea Weise (Abb. 48, 49), sjoestedti Weise und ovulum Weise (Abb. 53, 54). Bei Ortalia ovulum ist der Seitenrand viel breiter, O. ochracea ist größer und stärker gerundet, O. sjoestedti ist länger behaart und auf der Unterseite schwarz. Ein gutes Differentialmerkmal ist die Siphospitze (Abb. 45).
Material: Holotypus, männl.: Rwanda: Rusumo, Ibanda Makera 10.1993 leg. Th. Wagner (ZFMK).
Telsimia striata sp. n. (Abb. 55-61, 110)
Etymologie: lat. striatus -a = gestreift.
Diagnose: gerundet, schwarz mit einem rötlichen nierenförmigen Fleck wie Abb. 110 auf jeder Elytra. Zottig weiß behaart. Länge: 1.3—1.4 mm; Breite: 1.1 mm.
Coccinellidae aus Rwanda >|
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STR, [a] LD
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61
Tafel 3: 44—47 Ortalia gracilis sp. n. Holotypus: 44 Tegmen ventral (b); 45 Sipho (c); 47 Abdomen (a). — 48, 49: Ortalia ochracea: 48 Siphospitze von dorsal gesehen, 49 von ventral. — 50—52: Ortalia argillacea von Ibanda Makera. — 53, 54: Ortalia ovulum, Kamerun, Joko. — 55—61: Telsimia striata, Paratypen: 55 Aedeagus (c); 56 Hinterbein (b); 57 Hintertarsus (c); 58 Kiefertaster (c); 59 Mandibel (c); 60 weibl. Genitalplatten (b); 61 Abdomen (b).
22 Hakinsıch
Beschreibung: Kopf dicht punktiert, Oberfläche dazwischen glatt, weiß behaart. Prono- tum sehr dicht punktiert, Punkte größer als auf dem Kopf. Wirr weiß behaart. Pronotum- seiten gerundet mit deutlicher Randkante. Elytrenpunktierung noch größer als auf Pronotum, Oberfläche dazwischen sehr fein genetzt, glänzend. Behaarung lang, aufrecht. Auf jeder Elytra ein brauner Fleck wie Abb. 110. Elytrenseiten breit gerundet, Schultern vorgezogen.
Differentialdiagnose: Durch ihre Zeichnung von allen anderen afrikanischen Arten leicht zu unterscheiden.
Material: Holotypus, männl. Rwanda: Cyamudongo, 1700 m auf Carapa grandiflora 10. 1993 leg. Th. Wagner (ZFMK). 4 Paratypen mit den gleichen Daten (1 CF); 1 Paratypus: Rwanda: Rusumo, Ibanda Makera 10. 1993 auf Carapa grandiflora leg. Th. Wagner (CF).
Boschalis wagneri Fürsch (Abb. 62—66, 111) Boschalis wagneri Fürsch, 1995: 30, Abb. 49-52.
Diese von Herrn Thomas Wagner entdeckte Art wurde bereits von Fürsch (1995) ausführlich beschrieben; die Diagnose wird hier durch weitere Abbildungen ergänzt.
Material: Holotypus, männl.: Rwanda: Nyakabuye, Cyamudongo, 1700 m 10. 1993 auf Carapa grandiflora leg. Th. Wagner (ZFMK). 7 Paratypen mit den gleichen Daten (2 CF); 1 Paratypus: Rwanda: Rusumo, Ibanda Makera auf Lannea fulva (CF).
Scotoscymnus glabripilosus sp. n. (Abb. 67-70, 112)
Etymologie: lat. glaber = glatt; pilosus = behaart, wegen der im Vergleich zu anderen Arten relativ glatt nach hinten gerichteten Behaarung.
Diagnose: Dunkel rötlichbraun, langoval, Elytrenbehaarung regelmäßig nach hinten gerich- tet. Lange: 1.3—2.0 mm; Breite: 0.9—1.4 mm.
Beschreibung: Kopf mit Punkten von der Größe der Augenfacetten ziemlich dicht besetzt, Oberfläche dazwischen glatt. Behaarung dünn, lang, weiß. Pronotumpunktierung noch etwas größer, aber weniger dicht als auf dem Kopf. Pronotum an den Seiten stark gerundet, hinter der Mitte am breitesten. Behaarung weiß, lang, zum großen Teil nach vorne gerichtet. Elytren- punktierung und -behaarung wie auf Pronotum, aber Haare halbaufrecht und gleichmäßig nach hinten gerichtet. Elytrenseitenrand ziemlich breit und deutlich horizontal. Elytrenform länglich, vor der Spitze etwas eingezogen (gutes Merkmal!). 1. und 2. Abdominalsegment ver- einigt, aber Trennlinien doch noch zu erkennen.
Differentialdiagnose: Ähnlich S. rotundatus (Weise), bei dem aber die Proa tierung schwácher, dafúr Elytrenpunktierung viel stárker ist. Obwohl die neue Art sehr dunkel rotbraun sein kann, ist sie doch nie völlig schwarz wie S. niger (Weise). In der Behaarung sind die beiden Arten ähnlich. S. niger ist auf den Elytren stärker punktiert. Ein verläßliches Merk- mal ist die Siphospitze (Abb. 70). S. parvulus (Weise) und S. punctipennis (Weise) haben auf- fallendere Seitenränder und andere Aedeagi. S. minutus (Fürsch) ist weniger deutlich punk- tiert als S. glabripilosus und zudem schon an seiner konischen Körperform (kurz hinter den Schultern am breitesten) gut zu erkennen.
Material: Holotypus, männl.: Rwanda: Karengera 1700 m auf Carapa grandiflora 10. 1993 leg. Th. Wagner (ZFMK). 8 Paratypen mit den gleichen Daten (2 CF); 1 Paratypus: Rwanda: Rusumo, Ibanda Makera 10. 1993 leg. Th. Wagner; 3 Paratypen: Rwanda: Nyungwe, Kamiran- zovu 2000 m auf Carapa grandiflora 10. 1993 leg. Th. Wagner; 14 Paratypen: Rwanda: Cyamu- dongo 1700 m auf Carapa grandiflora 10. 1993 leg. Th. Wagner (4 CF).
Scotoscymnus maximus sp. n. (Abb. 71-76, 113)
Etymologie: lat. maximus = der Größte.
Diagnose: Gleichmäßig gerundet, dunkel rotbraun mit auffallend breitem Seitenrand. Eänse 151. 72mm# Breite" 4Smm:
Coccinellidae aus Rwanda 23
Tafel 4: 62—66 Boschalis wagneri: 62 Paratypus Tegmen, schräg ventral (b); 63 id. Holo- typus, lateral; 64—66 Paratypen; 66 weibl. Genitalplatte (b). — 67—70: Scotoscymnus glabri- pilosus sp. n. Paratypen. — 71-76: Scotoscymnus maximus sp. n. Paratypen. — 77—83:
Epilachna conspergata sp. n.: 77—78 Holotypus; 79—83 Paratypen. Unter 77: Maßstäbe für alle Detailzeichnungen.
24 HeakRinsch
Beschreibung: Kopf mit Punkten von der Größe der Augenfacetten locker besetzt, weiß behaart. Pronotum an den Seiten stark gerundet, Punktierung ziemlich fein, ungleich. Prono- tumbehaarung lang, dünn und wirr. Elytrenoberfläche fein genetzt mit viel größeren Punkten als auf dem Pronotum. Elytrenseitenrand besonders unter und hinter der undeutlichen Schul- terbeule breit subhorizontal. Die gleichmäßig gerundeten Elytren sind kurz vor der Mitte am breitesten. Elytrenhaare lang, weißlichgelb, zum größten Teil nach hinten gerichtet.
Differentialdiagnose: Viel breiter gerundet als S. glabripilosus und mit breiterem Elytrenseitenrand. Beste Merkmale: Die gekrümmte Dorsalseite des Basallobus, schwache Schulterbeule, stark ausgeprägter Elytrenseitenrand.
Material: Holotypus: Rwanda: Nyakabuye, Cyamudongo 1700 m auf Carapa grandiflora 10. 1993 leg. Th. Wagner (ZFMK). 27 Paratypen mit den gleichen Daten (9 CF); 1 Paratypus: Rwanda: Karengera 1700 m, sonst gleiche Daten. Weiteres Material: Zaire: Kivu Sud, Irangi 900 m auf Carapa grandiflora 10. 1993 leg. Th. Wagner.
Epilachna conspergata sp. n. (Abb. 77-83, 114), Epilachna sahlbergi-Gruppe (vgl. Fürsch 1963)
Etymologie: Lat. conspergere = bestreuen, die Oberfläche sieht wie mit Pfeffer bestreut aus.
Diagnose: Oval, braun mit wolkig unregelmäßiger schwarzbrauner Zeichnung wie Abb. 114. Lange: 3.8—4.4 mm; Breite: 3.2—3.5 mm.
Beschreibung: Kopf gelb mit schwarzbraunem Fleck auf der Stirn, der halb vom Prono- tum verdeckt ist (Holotypus, Paratypus), oder auch ganz schwarzbraun (Paratypus). Fein genetzt und mit feineren Punkten als die Augenfacetten. Pronotum mit Punkten von der Größe der Augenfacetten dicht besetzt. Pronotumbehaarung fein, weißlichgelb. Pronotum an den Seiten breit gerundet. Scutellum gelb, schwarz gerandet (Holotypus) oder ganz gelb. Elytrenpunktierung sehr dicht und größer als auf Pronotum. Behaarung kürzer als auf Prono- tum. Humeralcallus sehr deutlich. Elytrenabdachung gegen den Seitenrand flach. Abdomen dunkelbraun, Beine heller. Siphospitze etwas variabel, wie in der Gruppe um E. gyldenstolpei (Weise) üblich. |
Differentialdiagnose: In der Zeichnung sehr ähnlich E. zumpti Fürsch (1963). Bei dieser Art sind die Pronotumseiten gerade, während sie bei der neuen Art auffallend gerundet sind. Wichtigstes Differentialmerkmal: Markanter Höcker an der Basis des Basallobus bei E. zumpti, wogegen die neue Art hier kaum eine flache Erhebung zeigt. Die Elytrenpunktie- rung ist bei E. conspergata etwas stärker als bei E. zumpti.
Material: Holotypus, männl.: Rwanda: Nyungwe, Kamiranzovu 2000 m auf. Carapa grandi- flora 10. 1993 leg. Th. Wagner (ZFMK). 1 Paratypus mit den gleichen Daten (CF); 2 Para- typen: Rwanda: Karengera 1700 m auf Carapa grandiflora 10. 1993 leg. Th. Wagner (ICF); 1 Paratypus: Rwanda: Nyakabuye 28. 10.—2. 11. 1983 leg. H. Mühle (CF).
Epilachna apiceoculata sp. n. (Abb. 84-86, 115), Epilachna sahlbergi-Gruppe
Etymologie: lat. apex, apicis = Spitze; oculatus = mit Augenflecken versehen, wegen der auffälligen Zeichnung an der Elytrenspitze.
Diagnose: Braun mit schwarzer Zeichnung wie Abb. 115. Basallobus auffallend dick. Länge: 3.3 mm; Breite: 2.6 mm.
Beschreibung: Kopf in der Mitte schwarz, neben den Augen braun, dicht punktiert und behaart. Oberlippe, Fühler und Mundwerkzeuge braun. Pronotum braun, gelbweiß und lang behaart. Pronotumseitenrand sanft gerundet, seine Oberfläche kaum sichtbar genetzt, aber dicht punktiert. Punkte von der Größe der Augenfacetten und durch Zwischenräume dieser Größe voneinander getrennt. Scutellum braun. Elytren braun mit schwarzer Zeichnung wie Abb. 115. Ebenso dicht und etwas größer punktiert als Pronotum. Behaarung wie auf Prono- tum. Humeralcallus sehr auffällig. Die Elytrenwölbung fällt steil zum nicht gekanteten Seiten- rand ab. Elytren hinter der Mitte am breitesten. Unterseite und Beine braun. Femorallinie ein gleichmäßiger Bogen, der 2/3 der Länge des ersten Abdominalsternits einschließt und beinahe den Vorderrand erreicht.
Coccinellidae aus Rwanda 25
Tafel 5: 84-86 Epilachna apiceoculata sp. n. Holotypus; 87—97 Epilachna gyldenstolpei: 87, 88: Kivu, Shibinda; 89 Butembo; 90 Irangi; 91 Nyakabuye; 92 Parc Nat. des Volcans, Lubero; 94, 95 Ruwenzori; 96 Virunga; 97 Nyakabuye.
26 H. Fúrsch
Differentialdiagnose: In der Verwandtschaft um Epilachna gyldenstolpei (Weise) (vel. Fürsch 1963) ist es bei der Variabilität der Zeichnung und der Siphospitzen sehr schwierig, Arten abzugrenzen. Epilachna apiceoculata ist habituell sicher nicht zweifelsfrei zu erkennen, zumal das einzige vorliegende Expl. keine Hinweise auf die Variabilität zuläßt. Das beste Merkmal ist der dicke Basallobus. Das Problem bei diesen Arten ist die Variabilität der Sipho- spitzen. Wagners Ergebnisse erlauben, zusammen mit dem ungeheuren Material des MRAC, eine Darstellung dieser Variabilität (Abb. 87—97). Auch in Form und Färbung des Körpers sind die Arten variabel, ganz besonders E. gyldenstolpei. Bei letzterer ist die Elytrenwólbung flacher, besonders zum Seitenrand hin. E. aulisoides (Weise) ist weniger deutlich punktiert, und die Schulterbeule ist flacher.
Material: Holotypus: Rwanda: Prov. Cyangugu, Umgebg. Nyakabuye 13.—15. 5. 1985 leg. H. Mühle. Gen. Präp. Nr. 3153 (ZSM)
Epilachna carapacola sp. n. (Abb. 98, 99, 116, 117), Epilachna canina-Gruppe (vgl. Fürsch 1985a)
Etymologie: Zusammengezogen aus Carapa = Baumgattung und lat. incola = Bewohner.
Diagnose: Ockerbraun mit schwarzbrauner, unvollständiger Netzzeichnung wie Abb. 116, 117. Länge: 5.2—6.1 mm; Breite: 4.6—4.8 mm.
Beschreibung: Kopf rotbraun, sehr dicht punktiert. Punkte etwa von der Größe der Augenfacetten, Oberfläche dazwischen kaum mehr sichtbar. Mundwerkzeuge schwarz mit braunen Rändern. Pronotum rotbraun, ebenfalls sehr dicht punktiert. Behaarung wie auf Kopf weiß, ziemlich lang, aber zart. Innerhalb des aufgewulsteten Pronotumseitenrandes eine flache Depression. Elytren heller als Kopf und Pronotum. Elytrenpunktierung sehr dicht, die gröberen Punkte etwa 4mal so groß wie auf dem Pronotum, die kleineren etwa so groß wie auf dem Pronotum. Das schwarze Netz sehr unvollständig wie Abb. 116, 117. Elytrenseiten- rand ganz schmal gewulstet, schwarz, daneben sanft eingemuldet. Femorallinie nahezu voll- ständig. Unterseite und Beine schwarz, Abdomenseiten braun.
Differentialdiagnose: Ausgezeichnet durch stark unvollständige Elytrenzeichnung, Siphospitze ohne Serra (Fürsch 1985a: 193) und einen Basallobus, der steiler abfällt als bei einer anderen Art. Nach der Tabelle von Fürsch (1985a) käme man zur südafrikanischen Epilachna dregei Mulsant, die aber eine viel längere Lobusspitze hat, abgesehen von der voll- ständigeren Elytrenzeichnung.
Material: Holotypus, männlich: Rwanda: Cyamudongo, 1700 m auf Carapa grandiflora 10. 1993 leg. Th. Wagner (ZFMK). 1 Paratypus weibl. (ZFMK), 1 männl. (CF) mit den gleichen Angaben.
Afidenta muehlei sp. n. (Abb. 100-105, 118)
Etymologie: Dem Entdecker Hans Mühle, München, gewidmet, der ein Forstprojekt in Rwanda wissenschaftlich betreut hat und dabei eine höchst bemerkenswerte Ausbeute mitbrin- gen konnte.
Diagnose: Rot, auf den Elytren mit zusammen 13 kleinen schwarzen, runden Flecken wie Abb. 118. Länge 3.3—3.4 mm; Breite: 2.6—2.7 mm.
Beschreibung: Kopf gelb (Holotypus) oder rot mit flachen Punkten, die etwas größer sind als die Augenfacetten, fein genetzter Oberfläche und goldgelber Behaarung. Pronotum rot, in den Vorderwinkeln gelb und auf glatter Oberfläche etwa in gleicher Größe wie auf Kopf punktiert. Elytren rot mit kleinen schwarzen, runden Flecken wie Abb. 118, so stark und ungleichmäßig punktiert, daß sie auch bei stärkerer Vergrößerung rauh erscheinen. Elytren- seitenrand schmal horizontal. Schulterbeule deutlich. Femorallinie Abb. 103. Aedeagus: Spitze des Basallobus leicht paramerenwärts gekrümmt.
Differentialdiagnose: Von Afidenta maderi (Korschefsky) kaum zu unterscheiden, letztere Art hat auf der Naht nur zwei gemeinschaftliche Flecken und die neue Art drei. Afidenta malawiensis Fürsch (1996) hat wohl größere Flecken, ist aber im Aedeagus ähnlich.
Coccinellidae aus Rwanda 27
- Tafel 6: 98—99: Epilachna carapacola sp. n. Holotypus: 98 Aedeagus (a); 99 Tegmen (b). — 100-105: Afidenta muehlei sp. n.: 100—103 Holotypus; 104, 105 Paratypus. — 106—119: Umrißskizzen: Maßstab für 106—113 neben Abb. 111 = 1 mm; Maßstab für 114—119 neben Abb. 116 = 5 mm. 106 Scymnus rwandensis; 107 Nephus rugulipennis; 108 Nephus brevipilo- sus; 109 Pseudoscymnus brunneus; 110 Telsimia striata; 111 Boschalis wagneri; 112 Scotoscym- nus glabripilosus; 113 Scotoscymnus maximus; 114 Epilachna conspergata; 115 Epilachna apiceoculata; 116, 117 Epilachna carapacola; 118 Afidenta muehlei; 119 Afidenta scitula.
28 Eres
In der Tabelle von Fürsch (1986) käme man zur äußerlich gleichen westafrikanischen Afidenta scitula (Weise) (Abb. 119), aber deren Aedeagus ist völlig verschieden, und ihre Pronotum- ränder sind stärker aufgebogen, auch die Punktierung ist etwas gröber als bei der neuen Art. Diese äußerliche Gleichheit zweier Arten ist bei dieser Gattung keineswegs neu (vgl. Fürsch 1986).
Material: Holotypus, männl.: Rwanda: Prov. Cyangugu, Umgebg. Nyakabuye 13.—15. 5. 85 leg. H. Mühle Gen. Präp. 3160 (ZSM). 2 Paratypen: gleiche Angaben, aber 10. 1. 1986, 1 Paratypus: 30. 1.—3. 2. 1984 (CF). Weiteres Material: Rwanda: Rangiro 9. 1976 leg. Werner (CF), bei Fürsch (1986: 90) als Afidenta scitula angegeben. Letztere Art bleibt damit auf West- afrika beschránkt.
Danksagung
Herrn Thomas Wagner sei auch hier nochmals herzlich für die Möglichkeit gedankt, seine Ausbeute bearbeiten zu können. Besonderen Dank schulde ich Herrn Hans Mühle für die Überlassung seiner großen und wertvollen Aufsammlung. Ohne die bereitwillige und verständ- nisvolle Zusammenarbeit mit den großen Museen wären taxonomische Arbeiten heute nicht mehr denkbar, deshalb danke ich den Leitern dieser Institute ganz besonders. Es sind die Damen und Herren Dres. H. André, Tervuren, M. Baehr, München, Nicole Berti, Paris, R. G. Booth, London, M. Cludts Bruxelles, R. L. Davidson, Pittsburgh, H. Silfverberg, Helsinki und M. Uhlig, Berlin.
Zusammenfassung
Die Coccinellidenausbeute, die Thomas Wagner in Rwanda und Ostzaire vor allem durch Benebeln der fiir bestimmte Phytozónosen charakteristischen Baumarten mit Pyrethrum sam- meln konnte, wurde hier bearbeitet. Dazu wurde weiteres Material von Hans Mühle aus Rwanda ausgewertet. Folgende neue Arten werden beschrieben und abgebildet: Afidenta muehlei, Boschalis wagneri, Epilachna carapacola, Epilachna conspergata, Nephus brevipilo- sus, Nephus rugulipennis, Ortalia gracilis, Pseudoscymnus brunneus, Scotoscymnus glabripi- losus, Scotoscymnus maximus, Scymnus rwandensis, Telsimia striata. Neue Synonyme: Scym- nus luniferus Sicard ist jüngeres Synonym von Scymnus usambaricus Weise und Scymnus (Nephus) circumcinctus Mader ein jüngeres Synonym von Nephus (Sidis) burgeoni Mader.
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Dr. Helmut Fürsch, Bayerwaldstraße 26, D-94161 Ruderting.
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Bd. 47 S. 31—41 Bonn, September 1997
Neue Glasfliigler (Lepidoptera, Sesiidae) aus dem Pamir und dem Hindukusch
K. Spatenka
Abstract. Five new species of clearwing moths from Central Asia are described. Bembecia pashtuna sp. nov. from Pakistan, Baluchistan, is closely related to B. dispar and B. tsvetajevi; the larva lives in Astragalus lacei. B. aloisi sp. nov. originates also from Baluchistan and the larva lives in Onobrychis dealbata. It forms part of the B. ichneu- monisformis-group and resembles B. zebo. The same applies to B. karategina Sp. nov. which was collected by a single pair from Tadzhikistan. Its larval bionomy remains unknown. Chamaesphecia mudjahida sp. nov. is only known from a single specimen from Afghanistan (Nuristan). It is similar in wing shape to Ch. mutilata, but is more loosely related to Ch. masariformis. Its larval bionomy remains also unknown. Ch. weidenhofferi sp. nov. from SW-Uzbekistan ist related to Ch. zimmermanni and Ch. ferganae. The larva lives in Phlomis betonicifolia.
Key words. Lepidoptera, Sesiidae, clearwing moths, systematics, Pamir, Hindukush.
Zusammen mit A. Pavlicko (Prachatice) und Z. Weidenhoffer (Praha) unternahm ich 1992 eine Sammelreise in einige Gebirge Pakistans, in deren Verlauf es gelang, zwel neue Glasflügler-Arten zu entdecken. Für beide konnte auch die Larvalbionomie geklärt werden. Die Beschreibungen beider Taxa ergánze ich um drei weitere Beschreibungen neuer Arten aus Afghanistan, Tadzhikistan und Uzbekistan. Obwohl von den ersten zwei nur sehr wenig Material zur Verfügung steht, habe ich mich entschlossen, diese Arten zu beschreiben, da sie aus Gebieten stammen, bei denen nur sehr geringe Aussichten bestehen, weiteres Material zu erhalten.
Bembecia pashtuna sp. n. (Abb. 1, 2)
Material. Holotypus ©, Pakistan, Baluchistan, 7 km O Ziarat, ca 150 km N Quetta, 2500—2700 m, ex p. 29. 6. 1992, coll. Museum Witt, Múnchen'; Paratypen: 10 00,4 99, gleicher Fundort, 19.—24. 6. 1992, davon 1 © in coll. A. Kallies; 1 ©, gleicher Fundort, 15. 6. 1992; 3 o ©, gleicher Fundort, 16. 6. 1992, Anflug an Pheromon Nr. 15 (Dr. Priesner); 1 ©, gleicher Fundort, 16. 6. 1992, Anflug an Pheromon Nr. 16 (Dr. Priesner); 4 © ©, gleicher Fundort, 18. 6. 1992, Anflug an Pheromon Nr. 5 (Dr. Priesner), alle K. Spatenka leg. in coll. K. Spatenka und Museum Witt, München; 1 Q, Afghanistan, Hazarajat, Koh-i-Baba, Shah- tu-Kotal, 4000 m, 20.—21. 6. 1961, G. Ebert leg., in coll. Zoologische Staatsammlung, Mün- chen; 1 9? NO-Afghanistan, Badachschan, Khinsch-e-Andarab, 3500—4000 m, 21. 7. 1957, G. Ebert leg., in coll. Zoologische Staatssammlungen, München (bei diesem Exemplar fehlt das Abdomen).
_ Männchen. Spannweite 20,0 mm. Kopf: Labialpalpus dorsal schmutzigweiß, 3. Glied apikal schwarz, innen weißlich, außen schwarz mit langen haarförmigen Schuppen; Stirn schwarz mit einzelnen weißlichen Schuppen vor dem Auge; Scheitel schwarz, dicht mit langen weiß-
! Die umfangreichen Sammlungen des Museums Witt in München werden zu gegebener Zeit an die Zoologische Staatssammlung in München transferiert.
32 K. Spatenka
lichen Haarschuppen bedeckt; Antenne schwarz mit sehr langen Cilien, ventral mit einzelnen ockergelben subapikalen Schuppen.
Thorax: schwarz; Metathorax mit schmalen, langen, schmutziggelben Haarschuppen; Patagia lateral mit einzelnen weißlichen Schuppen. Vorderbein schwarz, Femur mit langen grauen Haarschuppen, Tibia und Tarsus ventral mit ockergelben Schuppen durchsetzt. Hinter- bein schwarz, Coxa und Femur mit grauen Haarschuppen, Tibia ventral mit einzelnen weiß- lichen Schuppen, Tarsus mit ockergelben Schuppen durchmischt, die 1. Tarsomere ventral weißlich, Sporne schwarz.
Vorderflügel: braunschwarz mit schwach entwickelten Glasfeldern. Costalrand, das Apikal- feld, Diskalfleck und Cubitalstamm schwarz, Fransen lang, dunkelbraun, Analrand und die Adern MI, M2 im äußeren Glasfeld (ETA) ockergelb bestäubt. Das hintere Glasfeld (PTA) nur rudimentár, das Keilfeldchen auf etwa die Hälfte verkürzt, das ETA breiter als hoch, durch die Adern in 3 Zellen geteilt, etwa so breit wie der Diskalfleck und das Apikalfeld; Costalrand unterseits weißlich, Analrand ockergelb, Diskalfleck, Apikalfeld und die Adern im ETA schwarz; Fransen dunkelbraun, leicht schmutziggelb durchmischt.
Hinterflügel: hyalin, die Adern, die langen Fransen, der breite ea sowie der breite keilförmige Diskalfleck dunkel braunschwarz; unterseits von gleicher Färbung, Adern und der Diskalfleck mit sehr spärlichen ockergelben Schuppen.
Abdomen: schwarz, die Hinterränder der Tergite 4, 6 und 7 schmal weißlich beschuppt; ventral schwarz, das vierte Sternit mit schmutziggelbem Hinterrand, der aber medial unter- brochen ist, das siebte Sternit mit einzelnen weißlichen Schuppen am Hinterrand; der Anal- busch schwarz, medial mit einzelnen schmutzig gelbweißen Schuppen, Valven gelbweiß.
Weibchen. Körper, Flügel, Beine, Antennen und Labialpalpen dunkel braunschwarz; einzelne schmutziggelbe Schuppen auf der Stirn und dorsolateral an den Hinterrändern der Abdomi- naltergite 4 und 6, schwache schmutzigweiße Bestäubung auch dorsal auf den Palpengliedern 122:
Variabilität. Spannweite 18,0—22,5 mm. Die Weibchen variieren sehr wenig, die Männchen stärker, einige haben mehr oder weniger ausgeprägte helle Bestäubung. Das Extrem bildet ein Männchen mit schmutzigweißen Beinen (nur Hintertibia mit schwarzem Ring). Bei diesem Stück finden sich auf der Außenseite des Diskalfleckes einzelne ockergelbe Schuppen, das ETA ist länger und breiter, mit einer rudimentären vierten Zelle, die Analader und die Flügel- wurzel am Analrand des Hinterflügels ockergelb bestáubt, die hellen Ringe auf dem Abdomen breiter und nicht nur weißlich, sondern proximal leicht gelblich, der Analbusch in der Mitte deutlich ockergelb durchmischt. Zwischen der typischen und der Extremform der Männchen sind Übergangsformen zu finden. Bei einem Weibchen ist die braunschwarze Bestäubung des Vorderflügels an der Stelle des Keilfeldchens weniger dicht.
Genitalapparat © (Abb. 9). Valve mittelbreit, mit gerundetem Apex, die kahle Fläche dorsal einfach-konkav gewölbt, Crista sacculi gerade, schmal, apikal zugespitzt, nicht den Ventral- rand der Valve erreichend, die Dorsalkante im basalen Drittel mit kräftigen Borsten bestanden, die subapikal quer über die ganze Breite der Crista eine Linie bilden; Gnathos einfach, mit löffelförmigen Lateralkanten, Crista medialis schwach entwickelt; Aedeagus sehr schlank.
Genitalapparat Q. Nicht untersucht.
Differentialdiagnose. Die neue Art ist mit einer Gruppe deserticoler Arten, wie B. dispar, B. syzcjovi, B. tsvetajevi und B. deserticola, verwandt. Hierher gehören wahrscheinlich auch B. tshimgana und B. vidua. Phänotypisch ähnelt das Weibchen der neuen Art am meisten B. dispar und B. tsvetajevi, teilweise auch B. vidua, das Männchen nur den dunklen Formen von B. tshimgana. Das Männchen von B. tshimgana hat eine gelbe Halskrause (bei B. pash- tuna sp. n. schwarz), gelb begrenzte Tegulae (bei B. pashtuna sp. n. schwarz), der Metathorax (bei B. pashtuna sp. n. schwarz) und auch weitere Körperteile sind gelb statt weiß; dagegen ist der Analrand des Vorderflügels bei B. tshimgana braunschwarz und nicht schmutziggelb. Von B. vidua ist nur der Holotypus bekannt, ein einzelnes Weibchen nicht ganz klarer Her- kunft (Samarkand). Dieses Exemplar ist ebenfalls braunschwarz, hat aber teilweise durchsich- tige Vorderflügel und fast ganz durchsichtige Hinterflügel. Trotzdem kann man nicht aus-
Neue Glasflügler aus dem Pamir und Hindukusch 33
schließen, daß B. pashtuna nur eine Subspecies von B. vidua darstellt. Diese taxonomische Frage ist jedoch ohne weiteres Material von B. vidua und ohne Kenntnisse der Bionomie dieser Art nicht lösbar. Das Weibchen von B. dispar aus Nordafrika ist im Durchschnitt größer (27 mm) und hat vollständig braunschwarze Beine und ein ebenso gefärbtes Abdomen (bei B. pashtuna mit heller Beimischung); bei B. dispar ist das dritte Palpenglied schwarz und die Stirn rein weiß, bei B. pashtuna schwarz, und die Stirn hat nur einzelne helle Schuppen. Beim Weibchen von B. dispar kommen sehr oft Stücke mit einer kleinen durchsichtigen Fläche zwischen den Adern M3-Cu2 im Hinterflügel vor, bei B. pashtuna ist hingegen die ganze Flügelfläche braunschwarz. Die 9 Q von B. tsvetajevi treten in zwei Formen auf, einer gelben und einer schwarzen. Die letztgenannte Form ähnelt B. pashtuna. Sie unterscheiden sich aber durch die gelbe Stirn sowie die gelbe Halskrause. Ähnlich wie B. dispar ist auch B. tsvetajevi im Durchschnitt größer (27 mm).
Bionomie. Die Raupe ist zweijährig und lebt in den dicken Wurzeln des seltenen, bis 1,5 m hohen, gelbblühenden Astragalus lacei, manchmal zahlreiche Raupen in einer einzigen Wurzel (ähnlich wie B. tshimgana oder B. dispar). Sie baut ein Röhrchen aus Wurzelspánen, das innen fein ausgesponnen ist und das manchmal einige Millimeter aus dem Wurzelkopf herausragt. Die Verpuppung findet in einer kleinen Kammer im Proximalende dieses Röhrchens statt. Die Imagines schlüpfen in der zweiten Junihälfte und vermutlich auch noch im Juli. Sie fliegen vormittags (8.30—11.30) an künstliche Sexual-Pheromone an.
Habitat. Lichte Juniperus-Wälder und verlassene Gärten an Abhängen mit nördlicher Exposi- tion, unter dem Ziarat-Paß in Baluchistan in Höhen zwischen 2500—2700 m über NN, wo die Futterpflanze sehr vereinzelt vorkommt. Zusammen mit der neu beschriebenen Art fliegt auf den Lokalitäten auch häufig Chamaesphecia xanthosticta (Hampson, [1893]) und vereinzelt B. aloisi sp. n.
Verbreitung. Bisher wenig bekannt, wahrscheinlich im ganzen Hindukusch-System verbreitet. Aus sesiidologischer Sicht stehen die Arten Baluchistans in sehr enger Beziehung zu denen des westlichen Pamir-Alai-Gebietes. So fliegt die bemerkenswerte rotorange Form von Bembecia stiziformis tenebrosa (Püngeler, 1914), die bisher nur aus Aman Kutan südlich von Samarkand bekannt war, ebenfalls am Ziarat-Paß. Weiterhin erwies sich die aus Baluchistan beschriebene Sesia ommatiaeformis (Moore, 1891) als identisch mit Sesia shugnana (Sheljuzhko, 1943) aus Chorog (Westpamir). Bisher ist aus Baluchistan kein Vertreter der orientalischen Glasflügler- fauna bekannt geworden.
Derivatio nominis. Die Art ist dem Stamm der Pashtunen gewidmet, deren Siedlungsgebiet großräumig mit dem bisher bekannten Areal von B. pashtuna zusammenfällt.
Bembecia karategina sp. n. (Abb. 3, 4)
Material. Holotypus ©, Tadzhikistan, Karategin Kette, Romit Tal, 38.40° N, 69.10? O, 1500 m, 12. 7. 1981, J. Vanék leg.; 1 Q Paratypus, wie oben; beide in coll. Museum Witt, München. Der Holotypus & und der Paratypus Q wurden in copula gefunden, so daß die Konspezifitát der beiden Exemplare gesichert ist.
Männchen. Spannweite 22 mm. Kopf: Labialpalpus dorsal weißgelb, ventral ockergelb, das erste und zweite Glied außen dicht schwarz beschuppt; Antenne schwarz; Stirn braun, vor dem Auge weißgelb; Scheitel schwarz, mit langen ockergelben Haarschuppen; Halskrause ocker- gelb.
Thorax: schwarz; Tegulae am Innenrand schmal gelb gesäumt; Scapularfleck weißgelb. Vor- derbein: Coxa dorsal gelb, ventral schwarz; Femur braunschwarz, dorsal reich gelb beschuppt; Tibia ockergelb mit kleinem dunklem Punkt; Tarsus ockergelb. Hinterbein: Coxa und Femur braunschwarz, Tibia ockergelb, distal mit breitem schwarzem Band; Tarsus ockergelb.
Vorderflügel: sehr charakteristisch geformt, der Außenrand nicht wie gewöhnlich konkav gewölbt, sondern fast gerade, dadurch der Apex sehr scharf; Costalrand breit schwarz beschuppt; Diskalfleck breit, schwarz, nur am Außenrand schmal ockergelb begrenzt; der Cubitalstamm, die Adern im Apikalfeld und der schmale Außenrand schwarz; der Analrand und das mittelbreite Apikalfeld ockergelb; Keilfeldchen gut entwickelt; PTA kurz; ETA breiter
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als hoch, breiter als Apikalfeld, die Adern im ETA gelb (M1, M2) bzw. schwarz (M3). Sie teilen das ETA in 4 leicht ockergelb bestáubte Zellen. Unterseite áhnlich, der Vorderrand dicht ocker- gelb bestáubt.
Hinterflügel: durchsichtig, mit schwarzen Adern, schmalem Außenrand und breitem keil- förmigen Diskalfleck, der den Aderstiel M3-Cul erreicht; die Adern und der Analrand unter- seits dicht ockergelb bestäubt.
Abdomen: schwarz; das zweite Tergit mit schmalem, zitronengelbem Ring; viertes Tergit in der Distalhälfte zitronengelb; fünftes medial mit einzelnen Schuppen gleicher Farbe; sechstes Tergit fast und siebtes ganz zitronengelb; Analbusch schwarz, medial mit zitronengelbem Strich. Ventral das zweite Sternit distal sehr schmal gelb begrenzt; die Sternite 4—7 mit breiten zitronengelben Bändern.
Weibchen. Spannweite 25 mm, sehr dimorph. Antenne in der Mitte braun; Labialpalpus und Stirn zitronengelb; Scheitel ockergelb; Halskrause ockergelb; Tegulae im Prothorakalbereich ockergelb. |
Thorax: lateral ganz zitronengelb; Scapularfleck weißgelb; Metathorax breit ockergelb; Vor- derbein zitronengelb; Hinterbein dorsal zitronengelb, Tibia distal mit undeutlichem schwar- zem Band; ventral ist dieses Band kontrastreich und der Tarsus braun.
Vorderflügel: Glasfelder deutlich ausgeprägt; Vorderrand, Außenrand, Cubitalstamm, die Adern im ETA, das Apikalfeld und die innere Hälfte des Diskalfleckes dunkelbraun; Analrand ockergelb; Diskalfleck in der Außenhälfte orangegelb. Der Costalrand ventral leicht ockergelb bestäubt; zwischen den Adern im Apikalfeld kurze ockergelbe Strahlen.
Hinterflügel: durchsichtig mit dunkelbraunen Adern, schmalem Außenrand und langen Fransen; der Diskalfleck sehr schmal keilförmig, dunkelbraun, ventral ockergelb bestäubt.
Abdomen: schwarz; das zweite Tergit in der Distalhälfte zitronengelb, fünftes Tergit mit schmalem zitronengelbem Ring, sechstes Tergit in den hinteren zwei Dritteln zitronengelb; Analbusch zitronengelb, nur lateral schwarz. Sternite 5 und 6 fast ganz, 2 und 4 ganz zitronen- gelb; das dritte Sternit distal schmal zitronengelb umrandet.
Variabilität. Unbekannt. Genitalapparat. Nicht untersucht.
Differentialdiagnose. Das Männchen ähnelt ein wenig B. zebo aus der Turkestan-Kette (Tadzhikistan und Uzbekistan). Diese Art zeichnet sich aber durch einen konkaven Außenrand des Vorderflügels, ein großes ETA, einen wesentlich schmaleren Diskalfleck des Vorderflügels und einen sehr schwach entwickelten Diskalfleck des Hinterflügels aus. Besonders aufgrund
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Abb. 1—8: Imagines der neuen Glasflügler. — Abb. 1: Bembecia pashtuna sp. n., Holotypus o. Pakistan, Baluchistan, 7 km O Ziarat, ca 150 km N Quetta, 2500—2700 m, ex pupa 29. 6. 1992, leg. K. Spatenka (coll. Museum Witt, München). — Abb. 2: Bembecia pashtuna sp. n., Paratypus Q. Pakistan, Baluchistan, 7 km O Ziarat, ca. 150 km N Quetta, 2500—2700 m, ex pupa 19.—24. 6. 1992, leg. et coll. K. Spatenka (Praha). — Abb. 3: Bembecia karategina sp. n., Holotypus ©. Tadzhikistan, Karategin-Kette, Romit-Tal, 38.40° N, 61.90° O, 1500 m, 12. 7. 1981, leg. J. Vanék (coll. Museum Witt, München). — Abb. 4: Bembecia karategina sp. n., Paratypus Q. Tadzhikistan, Karategin-Kette, Romit-Tal, 38.40° N, 61.90° O, 1500 m, 12. 7. 1981, leg. J. Vanék (coll. Museum Witt, München). — Abb. 5: Bembecia aloisi sp. n., Holotypus ©. Pakistan, Baluchistan, Ziarat-Paß 9 km O Ziarat, 2700 m, ex pupa 23. 6. 1992, leg. K. Spatenka (coll. Museum Witt, München). — Abb. 6: Chamaesphecia mudjahida sp. n., Holotypus ©. Afghanistan, Nuristan: Bashgal, Menalgal, Dandizenor Mts., 2200—3000 m, 27.—29. 5. 1972, leg. C. M. Naumann, coll. Nr. 1217 (coll. ZFMK). — Abb. 7: Chamaesphecia weidenhofferi sp. n., Holotypus ©. Uzbekistan, 20 km SW Guzar, Gumbulak, 38.30° N, 66.21° O, 750 m, 3. 6. 1995, leg. K. Spatenka (coll. Museum Witt, München). — Abb. 8: Chamaesphecia weidenhofferi sp. n., Paratypus 9. Uzbekistan, 20 km SW Guzar, Gumbulak, 38.30° N, 66.21° ©, 750 m, 3. 6. 1995, leg. K. Spatenka (coll. Museum Witt, München).
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der Flügelform ähnelt B. karategina keiner der bisher bekannten Bembecia-Arten. Das Weib- chen ist durch das schmale braune Apikalfeld und das zitronengelbe vierte Tergit sowie die Fárbung des Abdomens auf der Ventralseite sehr charakteristisch.
Bionomie und Habitat. Die Larvalbionomie ist unbekannt; das vorliegende Paar wurde in einer bunten waldsteppenartigen Vegetation am Nordhang der Karategin-Kette im Kafirnagan- Tal, ca 30 km óstlich von Dushanbe, sitzend gefunden.
Anmerkung: Der Typenfundort ist schon seit mehreren Jahren wegen des Krieges in Tadzhiki- stan unzugänglich, so daß es kaum Aussicht auf weiteres Belegmaterial gibt. Deswegen habe ich mich entschieden, die neue Art nach nur einem Pärchen zu beschreiben. Gleiche Gründe führen mich auch zur Beschreibung der folgenden Art.
Derivatio nominis. Die Benennung erfolgt nach dem Fundgebiet, der Karategin-Kette in Tadzhikistan.
Bembecia aloisi sp. n. (Abb. 5)
Material. Holotypus ©, Pakistan, Baluchistan, Ziarat-Paß 9 km O Ziarat, 2700 m, 23. 6. 1992 ex p., coll. Museum Witt, München; Paratypen: 1 © gleiche Daten, 18. 6. 1992, Anflug an „tipuliformis“-Pheromone (Wageningen); 2 o ©, 8km O Ziarat, 2650 m, 18. 6. 1992, unspezi- fisch im Anflug an künstliche Pheromone; 1 ©, 7 km O Ziarat, 2600 m, 18. 6. 1992, unspezi- fisch im Anflug an künstliche Pheromone, alles K. Spatenka leg. et coll.
Männchen. Spannweite 18—20 mm. Kopf: Antenne schwarz, subapikal mit einzelnen ocker- gelben Schuppen; Labialpalpus blaßgelb, das dritte Glied schwarz durchmischt, das erste und zweite Glied außen schwarz, mit sehr langen Haarschuppen; Stirn weißgelb; Scheitel schwarz und mit dünnen grauen Haarschuppen bedeckt; Halskrause lateral kürzer und gelb, dorsal lang und grau.
Thorax: schwarz mit dichten, langen, grauen Haarschuppen; Scapularfleck hellgelb; Pata- gia lateral hellgelb, an der Basis des Vorderflügels ein gelber Haarpinsel; Metathorax mit sehr langen, gelbgrauen, dünnen Haarschuppen. Vorderbein: Coxa schwarz mit langen grauen Haaren, dorsal und apikal hellgelb; Femur schwarz; Tibia und Tarsus hellgelb. Hintercoxa und -femur schwarz mit grauen Haarschuppen; Tibia gelb, nur an der Basis und am Distalrand schmal schwarz; Sporne und Tarsen gelb.
Vorderflügel: Costalrand hellgelb; Costalrand, Außenrand und Cubitalstamm schwarz; Diskalfleck schwarz, schmal, nur an der Basis der Adern M1—M3 mit wenigen hellgelben Schuppen; Analrand dicht hellgelb bestäubt; die Adern MI—M3 im ETA hellgelb bestäubt; das Apikalfeld schmal, halb so breit wie das ETA, hellgelb, die Adern schwach schwärzlich bestäubt; Fransen sehr lang, grau, dreimal länger als die Breite des schwarzen Außenrandes, ETA in 5 Zellen geteilt, konkav gewölbt, die erste Zelle zwischen R3 und dem Aderstiel R4—RS5 extrem verkürzt. Unterseite ähnlich gefärbt, nur der Costalrand dicht weißgelb bestäubt.
Hinterflügel: durchsichtig; die Adern und der schmale Rand schwarz; Fransen sehr lang, grau; der Diskalfleck schwarz, sehr schmal, keilförmig, erreicht jedoch den gemeinsamen Stiel der Adern M3—Cul.
Abdomen: schwarz; das zweite Tergit distal breit hellgelb begrenzt; das vierte in der Distal- hälfte hellgelb; fünftes Tergit mediodorsal mit gelbem Fleck, sechstes und siebtes Tergit fast ganz hellgelb; der Analbusch rundlich, medial und lateral hellgelb, sonst schwarz. Das zweite Sternit am Distalrand breit gelb beschuppt, das dritte schwarz, Sternite 4—7 mit Ausnahme der schmalen proximalen Ränder hellgelb; Analbusch schwarz, mit gelben Schuppen durch- mischt, medial und lateral an der Basis gelb; Valven hellgelb beschuppt.
Weibchen. Unbekannt. Variabilität. Bei den 5 bisher bekannten Exemplaren unbedeutend.
Genitalapparat o (Abb. 10). Valve mittelbreit, dorsal gleichmäßig konkav gewólbt, Apex stumpf, die kahle Fläche relativ klein, dorsal einfach konkav gewölbt, Crista sacculi schmal, gerade, an der Dorsalkante bis zur Mitte mit kräftigen, stark sklerotisierten Borsten, subapikal
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Abb. 9—11: Genitalpráparate. — Abb. 9: Bembecia pashtuna sp. n., Paratypus O. Pakistan, Baluchistan, 7 km O Ziarat, ca 150 km N Quetta, 2500—2700 m, ex. p. 15. 6. 1992, leg. K. Spatenka (Gen.práp. O. Gorbunov 93—03). — Abb. 10: Bembecia aloisi sp. n., Paratypus o”. Pakistan, Baluchistan, Ziarat-Paß 9 km O Ziarat, 2700 m, ex pupa 23. 6. 1992, leg. K. Spatenka (Gen.práp. O. Gorbunov 93—02). — Abb. 11: Chamaesphecia weidenhofferi sp. n., Paratypus &. Uzbekistan, 20 km SW Guzar, Gumbulak, 38.30? N, 66.21 O, 750 m, 25. 5. 1995, leg. K. Spatenka (Gen.präp. O. Gorbunov 95—12). Maßstäbe: 0.5 mm.
noch eine kleine Gruppe gleicher Borsten (Seten), Apex der Crista sacculi zugespitzt; Gnathos einfach, mit schmalen bumerangförmigen Lateralkanten; Crista medialis schwach entwickelt.
38 K. Spatenka
Differentialdiagnose. Habituell áhnelt diese neue Art mehreren anderen Arten der Gattung, so z.B. B. puella, B. zebo, B. zuvandica, B. parthica, teilweise auch B. sirphiformis und B. flavida. Von diesen unterscheidet sie sich aber in der Genitalmorphologie. B. aloisi sp. n. gehört demzufolge in die „ichneumoniformis“-Gruppe (Gnathos und Crista sacculi einfach), während die übrigen ähnlichen Arten der „uroceriformis“-Gruppe (doppelte Gnathos), „scopigera“-Gruppe (gespaltene Crista sacculi) oder „megillaeformis“-Gruppe (doppelte Crista sacculi) zuzuorden sind.
Von den zentralasiatischen Arten steht B. zebo aus Tadzhikistan der neuen Art äußerlich am nächsten. Diese lebt ebenfalls als Raupe in Onobrychis, gehört genitalmorphologisch jedoch in die ,,scopigera“-Gruppe. Aber auch habituell unterscheidet sich B. zebo in einigen Details: die gelb gefärbten Körperteile sind ockergelb statt blaßgelb, die Patagia schwarz (bei B. aloisi sp. n. lateral hellgelb); der Diskalfleck des Vorderflügels breit (bei B. aloisi sp. n. schmal); das PTA im apikalen Drittel ockergelb (bei 2. aloisi sp. n. unbeschuppt).
Bionomie. Die Raupe hat offenbar eine einjährige Entwicklung und lebt. in der Wurzel der polsterbildenden Onobrychis dealbata (Fabaceae). Das Auffinden der Raupe in den dicken holzigen Wurzeln der stark dornigen, auf den Lokalitäten häufig vorkommenden Pflanze ist extrem mühsam. Wir konnten trotz großer Mühe in 5 Tagen nur eine Raupe und eine Puppe finden. Die Imagines sind im Freiland wahrscheinlich in der zweiten Junihälfte und im Juli zu finden. Ähnlich wie bei anderen Arten der Gattung Bembecia fällt ihre sexuelle Aktivität in die Vormittagsstunden.
Habitat. Trockene Abhänge auf felsigem Grund und Felsen im Ziarat-Tal und auf dem Ziarat- Paß in Höhen von 2600 bis 2700 m, wo die Futterpflanze ein dominierender Vertreter der perennierenden Vegetation ist. Onobrychis dealbata bildet hier, ähnlich wie O. cornuta in Transkaukasien oder wie O. echidna in der Turkestan-Kette, Polsterfluren.
Derivatio nominis. Die Art ist nach meinem Freund und Begleiter auf der Pakistan-Expedi- tion, Dipl.-Ing. Alois Pavlicko benannt, der mir beim Suchen nach Glasflüglern in Baluchistan und Kohistan sehr geholfen hat.
Chamaesphecia mudjahida sp. n. (Abb. 6)
Material. Holotypus ©, Afghanistan, Nuristan: Bashgal, Menalgal, Dandizenor Mts. 2200 — 3000 m, 27.—29. 5. 1972, C. M. Naumann leg., Coll.-Nr. 1217 (coll. ZFMK).
Beschreibung. Spannweite 20 mm. Kopf: Labialpalpus dorsal braun, auf dem ersten und zwel- ten Glied mit weißlichen Schuppen, auf der Innen- und Ventral-Seite zitronengelb; Antenne braun, nur ventral am Pedicellus mit einigen gelben Schuppen; Stirn braun; Scheitel schwarz; Halskrause hellgelb.
Thorax: schwarzbraun, lateral unter dem Vorderflügel mit gelbem Fleck; mit kleinem weiß- gelbem Scapularfleck; Tegulae an der Flügelbasis mit einer Gruppe haarförmiger gelber Schuppen. Vorderbein braun; Dorsalkante von Coxa, Femur und Tibia ventralwärts und die Distalenden der Tarsen hellgelb; Hinterbein braun; Tibia zitronengelb mit braunem Ring; Sporne hellgelb.
Vorderflügel: schmal und lang, braun, mit kleinen Glasfeldern; im Vorderflügelapex zwi- schen den Adern R4—RS5 und R5S—MiI ein kleiner blaßgelber Fleck; die Adern im ETA blaß- gelb; PTA sehr kurz; Keilfeldchen auf ca. die Hälfte verkürzt; ETA oval, halb so breit wie das braune Apikalfeld, durch die Adern in drei Zellen geteilt. Der ventrale Costalrand, der Anal- rand, der Cubitalstamm, die Ränder des Diskalflecks und das Apikalfeld im Apex reich blaß- gelb bestäubt.
Hinterflügel: unbeschuppt, mit braunen Adern, schmalem Außenrand, langen braunen Fransen und kurzem, breit keilförmigem, braunem Diskalfleck.
Abdomen: braunschwarz; Hinterrand von Tergit 2 schmal zitronengelb bestäubt; Tergit 4 zitronengelb; 6 am Hinterrand und 7 auf der gesamten Fläche zitronengelb bestäubt, wenn auch nicht dicht; Analbusch schmal, hellgelb, nur lateral mit einzelnen braunen Schuppen. Die Sternite 2, 4, 6 und 7 fast ganz hellgelb; das dritte Sternit mit schmalem, das fünfte mit breitem gelbem Distalrand.
Neue Glasflügler aus dem Pamir und Hindukusch 39
Variabilität. Unbekannt. Genitalapparat. Nicht untersucht.
Differentialdiagnose. Ch. mudjahida sp. n. ist wahrscheinlich mit Ch. minor (Staudinger, 1856), Ch. pechi (Staudinger, 1887) und Ch. masariformis (Ochsenheimer, 1808) nahe ver- wandt, unterscheidet sich aber habituell in vielen Merkmalen. Schon auf den ersten Blick ist bei Ch. mudjahida sp. n. die schmale und relativ lange Form der Flügel auffallend. Das ETA ist klein und sein Innenrand konkav gewölbt. Die oben genannten Arten haben kürzere und breitere Flügel und das ETA ist größer mit geradem Innenrand. Eine ähnliche Flügelform wei- sen die Vertreter der Untergattung Chamaesphecia (Typusart: Sphinx empiformis [Denis & Schiffermüller], 1775) auf, keine dieser Arten (mit Ausnahme der Ch. bibioniformis (Esper, 1800) hat freilich den hellen Scapularfleck. Aus dieser Gruppe ähnelt der neuen Art, gerade durch die Flügelform, die auch aus Afghanistan bekannte Ch. mutilata (Staudinger, 1887). Sie unterscheidet sich aber unter anderem durch die oben genannten Merkmale, durch den ganz schwarzen Kopf und die roten Ringe auf dem Abdomen.
Bionomie und Habitat. Unbekannt.
Derivatio nominis. Die Art ist den afghanischen Unabhängigkeitskämpfern, den Mudjahedin, gewidmet.
Chamaesphecia weidenhofferi sp. n. (Abb. 7, 8)
Material. Holotypus ©, Uzbekistan, 20 km SW Guzar, Gumbulak, 38.30° N, 66.21° O, 750 m, 3. 6. 1995, K. Spatenka leg., coll. Museum Witt, München; Paratypen: 1 Q, Uzbekistan, Malguzar Gebirge, Badbad, 39.54° N, 67.15° O, 900 m, 9. 6. 1995, K. Spatenka leg. et coll.; 14 00,5 Q 9 mit gleichen Daten wie der Holotypus, 2 @ Paratypen wie Holotypus, aber 28. 5. 1995, K. Spatenka leg. et coll. (davon 1 9 genitaluntersucht). Paratypen in den Samm- lungen K. Spatenka (Praha), Museum Witt (München) und ©. Gorbunov (Moskau).
Männchen. Holotypus ©: Spannweite 21 mm; eine mittelgroße rotgelbe Art. Kopf: Labial- palpus dorsal hell ockergelb, ventrolateral auf dem ersten und zweiten Glied mit langen, ocker- gelben und schwarzen Haarschuppen; Stirn glänzend grau, vor dem Auge mit gelbweißem Saum; Scheitel schwarz, mit dichten, hell ockergelben Haarschuppen; Halskrause hell ocker- gelb, lateral weißlich; Antennen schwarz, dicht hell ockergelb überstäubt.
Thorax: grau mit starkem grünlichem Glanz, lateral unter dem Vorderflügel mit mehl- weißem Fleck; Innenrand der Tegulae mehlweiß, Meso- und Metathorax distal mehlweiß beschuppt. Vorderbein: Coxa schwarz, Dorsalkante mehlweiß beschuppt, Femur, Tibia und Tarsus mehlweiß. Hinterbein: Coxa und Femur schwarz mit grün-metallischem Glanz, Femur distal mit mehlweißen Schuppen, Tibia schwarzbraun, bei den schmutzigweißen Spornen mit breiten mehlweißen Bändern, Tarsus mehlweiß, nur am Basalglied mit einzelnen dunkel- braunen Schuppen.
Vorderflügel: Costalrand schwarz mit grünem Glanz; Costalkante mehlweiß, zwischen den Costaladern mehlweiße Schuppen; Außenrand schmal, braunschwarz beschuppt: Analrand hell ockergelb; alle Glasfelder dicht beschuppt mit hell ockergelben Schuppen, nur zwischen den Medialadern drei durchscheinende, kurze und schmale, mit weißen Schuppen bedeckte Strahlen; Apikalfeld und Adern hell ockergelb; Fransen dreimal so lang wie die Breite des Außenrandes, braun mit mehlweißen Enden.
Hinterflügel: durchsichtig, mit braunschwarzem, schmalem Außenrand, mit schwarzen Adern und schwarzem, breit keilförmigem Diskalfleck, der den Aderstiel M3—Cul erreicht.
Abdomen: grauschwarz, mit grünem Glanz, das zweite und fünfte Tergit mit schmalem mehlweißem Hinterrand, das dritte Tergit medial am Hinterrand mit mehlweißem Fleck, die Tergite 4, 6 und 7 fast ganz mehlweiß; Analbusch schwarz, sublateral mit zwei breiten Strahlen mehlweißer Haarschuppen; lateral: auf dem zweiten Tergit mit einigen mehlweißen Schuppen, die Tergite 3—7 mit je einem großen mehlweißen Fleck; Sternite 3—7 grau, mit weißen Schup- pen auf den Hinterrändern, auf dem dritten Sternit nur sehr wenigen.
40 K. Spatenka
Weibchen. Spannweite 25 mm, robuster, Labialpalpus mehlweiß; Stirn weißlich; Scheitel rost- gelb; Innenseite der Tegulae breit ockergelb gerandet; Thorax mit unzusammenhängender ockergelber Mediallinie; Vorderflügel ockergelb mit zahlreichen orangegelben Schuppen am Analrand und im Apikalfeld; die Adern im ETA und im Apikalfeld mit verstreuten schwarzen Schuppen. Die hellen Partien des Vorderflügels ventral mehlweiß. Abdomen dick, das erste Tergit am Hinterrand mit einzelnen, hell ockergelben Schuppen, drittes Tergit medial am Hinterrand mit hell ockergelbem Fleck, Hinterránder der Tergite 2, 4—6 mit breiten, hell ockergelben Ringen. Sternite 4—7 mit schmalen mehlweißen Ringen.
Variabilität. Wenig ausgeprägt, die Grundfärbung des Vorderflügels ist bei einigen Männchen mehlweiß statt hell ockergelb, bei einigen Weibchen hell ziegelrot statt ockergelb; bei einem Weibchen ist das Abdomen dorsal fast ganz mehlweiß bestäubt.
Genitalapparat & (Abb. 11). Ähnlich den naheverwandten, ebenfalls in Phlomis spp. lebenden Arten Ch. ferganae Sheljuzhko, 1924, und Ch. zimmermanni (Lederer, 1872). Valve kurz, ebenso die Crista sacculi, am Ventralrand fehlt die Borstengruppe; Saccus kurz, breit, am Ende abgerundet; Aedeagus kurz, breit und gerade; Scopula gut entwickelt; Gnathos ohne Crista medialis, mit sehr schmalen Lateralkanten.
Differentialdiagnose. Ch. weidenhofferi sp. n. ist nahe verwandt mit Ch. zimmermanni und Ch. ferganae und ähnelt beiden Arten. Ch. zimmermanni ist u. a. schlanker, hat schmalere Flügel, schwarze Antennen, gut entwickelte Glasfelder, vollständig ockergelbe Hinterbeine. Das Abdomen ist ventral vollständig hell ockergelb und besitzt dorsal nur auf den Tergiten 2, 4, 6-7 (©) oder 2, 4, 6 (2) gleichfarbige Ringe. Die ebenfalls verwandte Ch. ferganae hat teilweise braunschwarz beschuppte Hinterflügel, und das Abdomen trägt nur einen weißlichen Ring. Eine weitere, nahe verwandte Art Ch. margiana (Püngeler, 1912) hat rote Vorderflügel und ein Abdomen mit sehr schmalen weißen Ringen.
Bionomie und Habitat. Die Raupe ist offensichtlich einjährig und lebt in den Wurzeln von Phlomis betonicifolia (Lamiaceae). Sie verpuppt sich in einer Kammer im Wurzelhals. Die Flugzeit der Imagines liegt offensichtlich zwischen Mitte Mai und Mitte Juni. Sie sind in den Vormittagsstunden sexuell aktiv. Sie fliegen nur bei Sonnenschein sehr schnell nahe über dem Boden und setzen sich auf die Blätter der Futterpflanze oder auf deren rote Blüten, an denen sie auch saugen.
Die Futterpflanze und wahrscheinlich auch diese neue Glasflügler-Art sind auf Hügeln mit sehr spärlicher Halbwüstenvegetation und auf steinigen, trockenen Weideplätzen in Höhen von 500 bis 1000 m über NN weit verbreitet. Auf solchen Plätzen stellt P betonicifolia die ein- zige höhere Pflanze dar und bildet mehrere Quadratkilometer große Bestände. Solche umfang- reichen Biotope wurden westlich von Sherabad (südwestlichstes Uzbekistan) und in niedrige- ren Lagen des Kugitangtau-Gebirges beobachtet, ferner nördlich von Sairob, westlich vom Akrabat-Paß (Tjubere-Oland-Kette), überall in den Hügeln zwischen Dekhanabad und Guzar und im Malguzar-Gebirge nördlich von Samarkand.
Derivatio nominis. Die neue Art trägt den Namen meines Freundes, des Lycaenidologen Dipl.- Ing. Zdének Weidenhoffer (Prag), der mich in den letzten zehn Jahren auf allen Expeditionen begleitet und beim Suchen von Glasflüglern sehr unterstützt hat.
Danksagung
Ich danke Herrn Prof. Dr. D. Podlech (Botanische Staatssammlung München) sehr für die Bestimmung der pakistanischen Futterpflanzen und Herrn Prof. Dr. C. M. Naumann (ZFMK, Bonn) für die leihweise Überlassung des Exemplars von Ch. mudjahida. Dr. O. Gorbunov (Moskau) fertigte die Illustrationen der Genitalpräparate an, wofür ich ihm zu besonderem Dank verpflichtet bin. Herrn A. Kallies (Greifswald), Herrn Prof. Dr. C. M. Naumann und Herrn Dr. D. Stüning (beide ZFMK, Bonn) danke ich für ihre Unterstützung bei der Vorberei- tung des Manuskriptes.
Neue Glasflügler aus dem Pamir und Hindukusch 41
Zusammenfassung
Es werden fünf neue Sesiiden-Arten aus Zentralasien beschrieben. Bembecia pashtuna sp. nov. aus Pakistan, Baluchistan, ist mit B. dispar und B. tsvetajevi verwandt; die Raupe lebt in Astragalus lacei. B. aloisi sp. nov., ebenfalls aus Baluchistan, lebt in Onobrychis dealbata. Sie gehört zur B. ichneumoniformis-Gruppe und ähnelt B. zebo. B. karategina sp. nov. wurde in einem Pärchen in Tadzhikistan gefangen und ähnelt ebenfalls B. zebo; ihre Larvalbionomie ist noch unbekannt; Chamaesphecia mudjahida sp. nov. ist bisher nur nach einem Stück aus Afghanistan (Nuristan) bekannt. Sie ähnelt durch die Flügelform Ch. mutilata, ist aber eher mit Ch. masariformis verwandt. Auch ihre Larvalbionomie ist unbekannt. Ch. weidenhofferi sp. nov. wurde in SW-Uzbekistan entdeckt. Sie ist mit Ch. zimmermanni und Ch. ferganae ver- wandt. Die Raupe lebt in Phlomis betonicifolia.
Literatur
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Gorbunov, O. (1992): Two new species of the genus Bembecia Hübner, 1819 from Middle Asia. — Atalanta, Würzburg 23: 249—253.
Sheljuzhko, L. (1924): Zwei neue palaearktische Aegeriiden-Arten. — Dt. ent. Z. Iris 38: 1832185:
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Spatenka,K.&Z.LaStüvka (1988): Typen der Glasflügler aus der Staudinger- und Pün- geler-Sammlung im Zoologischen Museum Berlin (Lepidoptera, Sesiidae). — Dt. ent. Z. OSI 339.
Spatenka, K. & O. Gorbunov (1992): Vier neue paläarktische Glasflügler (Sesiidae, Lepidoptera). — Entomofauna 13: 377— 393.
Spatenka,K.,Z.LaStüvka, O. Gorbunov, I. ToSevski & Y. Arita (1993): Die Systematik und Synonymie der paläarktischen Glasflügler-Arten (Lepidoptera, Sesiidae). — Nachr. ent. Ver. Apollo (N.F.) 14: 81 — 114.
Staudinger, O. (1889): Centralasiatische Lepidopteren. — Stettin. ent. Ztg 50: 22.
RNDr. Karel Spatenka, Vyletni 362, CR-142 00 Praha 4 — Pisnice, Tschechische Republik.
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Bd. 4 $. 43-57 | Bonn, September 1997
Neue Glasfliigler-Arten und Unterarten aus Europa und der Türkei (Sesiidae, Lepidoptera)
K. Spatenka
Abstract. Nine new species and subspecies of clearwing moths (Sesiidae) are described from Europe and Turkey. Many specimens of Bembecia peterseni sp. n. have been collected from a number of localities in Anatolia (Turkey). It resembles a number of Bembecia species and is closely related to B. iberica from France, Spain and Morocco. Synanthedon hera sp. n. described from several specimens from the Taurus (Turkey) is closely related to S. manni. Dipchasphecia intermedia sp. n. was collected and bred from specimens originating from the Pontus and Taurus Mts (Turkey). It resembles D. lanipes and D. krocha its larva living in Acantholimon sp. Chamaesphaecia kautti from Nigde (Turkey), closely related to Ch. bibioniformis. Chamaesphecia taurica sp. n. also belongs into the same group. Synanthedon stomoxiformis riefenstahli ssp. n. from southern Spain, Synanthedon andrenaeformis tenuicingulata ssp. n. from north-eastern Turkey and from Armenia, Bembecia pavicevici dobrovskyi ssp. n. from the Taygetos Mts (Greece), and Bembecia syzcjovi kappadocica ssp. n. from Kappadokia (Asia Minor) represent new subspecies of species already known from other parts of the Palaearctic region.
Key words. Sesiidae, clearwing moths, systematics, Europe, Turkey.
Mit dieser Arbeit wird eine Reihe von Beschreibungen neu entdeckter Glasflügler- Arten fortgesetzt. Besonders in den letzten ca. 10 Jahren vermehrte sich die Anzahl der Anhánger dieser bemerkenswerten Schmetterlingsgruppe in ganz Europa, beson- ders aber in Deutschland. Diese Tatsache ist sicher mit der leichteren Zugänglichkeit synthetischer weiblicher Sexualpheromone verbunden, die auch den Entomologen, die bisher nie im Leben einen Glasflügler gesehen haben, umfangreichere Ausbeuten ermöglicht. Als Folge dieser intensiven Sammelaktivitát wurden viele neue Arten entdeckt. Leider führt dies aber auch dazu, daß dem Studium der Bionomie der Arten weniger Aufmerksamkeit gewidmet wird.
Synanthedon stomoxiformis riefenstahli ssp. n. (Abb. 1)
Material. Holotypus ©, Spanien, Provinz Alicante, Orcheta, 500 m, 18.—22. 5. 1993, H. Rie- fenstahl leg., coll. Museum Witt, Miinchen!'; Paratypen: 1 © mit gleichen Daten, 4 0,19, Spanien, Provinz Alicante, Relleu, 21.—23. 5. 1993, H. Riefenstahl leg. et coll.
Differentialdiagnose. Spannweite 28 mm. Von der Nominatform wie folgt unterschieden: Apikalfeld sehr breit, breiter als das Rundfeldchen (ETA) (sehr reduziert in der Nominat- form), schwarzbraun; Diskalfleck des Hinterflügels wesentlich breiter; die Beine schwarz mit grünviolettem Glanz (Tarsen bei der Nominatform hellbraun); Thorax vollkommen schwarz - (Innenrand der Tegula bei der Nominatform rot).
Eine ähnliche Unterart ist aus Kleinasien und Transkaukasien bekannt: S. s. amasina (Stau- dinger, 1856). Bei dieser Unterart ist die Tegula breit rot begrenzt, und nur die Abdominal- sternite 4 und teilweise 5 sind rot, bei S. s. riefenstahli ssp. n. und S. s. stomoxiformis (Hübner,
! Die umfangreichen Sammlungen des Museums Witt in München werden zu gegebener Zeit an die zoologische Staatssammlung in München transferiert.
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1790) sind die Sternite 4—7 rot. Die Raupe der Subspecies amasina lebt in den Wurzeln von Rhamnus palasi (Rhamnaceae).
Bionomie und Habitat. Die Raupe ist wahrscheinlich zweijährig und lebt nach den Angaben des Entdeckers in den Wurzeln von Rhamnus cathartica (Rhamnaceae) und Crataegus sp. (Rosaceae).
Verbreitung. Bisher nur von der Typenlokalitát bekannt.
Derivatio nominis. Die neue Unterart ist ihrem Entdecker gewidmet.
Synanthedon andrenaeformis tenuicingulata ssp. n. (Abb. 2)
Material. Holotypus ©, Türkei, Avcı Dagları, Girlevik, 39.35° N, 39.44° O, 17. 6. 1993, T. Dobrovsky leg., coll. Museum Witt, München; Paratypen: 1 o, 1 -Q dito, VI. 1993 ex pupa, T. Dobrovsky leg. et coll., 1 © Türkei, Provinz Kars, Sarikamis, 2000 m, 21.—23. 7. 1992, A. Kallies leg. et coll.
Männchen. Spannweite 20 mm. Antenne schwarz; Labialpalpus schwarz, unten ockergelb; Kopf und Thorax schwarz; der Vorderflügel mit gut entwickelten Glasfeldern; ETA breiter als das schwarze Apikalfeld, außen konkav gewölbt; der breite Diskalfleck, die Adern und Ränder schwarz. Ventral: Apikalfeld dunkel; der Vorder- und Hinterrand mit hellen, schmutziggelben Schuppen bestäubt. Hinterflügel durchsichtig mit breitem, keilförmigem schwarzem Diskal- fleck und schwarzem Außenrand; Adern, Fransen und Beine schwarz, nur die Tarsen dorsal mit verstreuten ockergelben Schuppen, ventral ockergelb. Abdomen schwarz mit sehr schma- len, hell ockergelben Ringen auf den Tergiten 2 und 4, lateral schwarz mit hell ockergelben Flecken auf den Tergiten 1 und 2, ventral schwarz mit schmutziggelben Sterniten 4—6; Anal- busch schwarz, Valven dunkel ockergelb bestäubt.
Weibchen. Ähnelt sehr dem Männchen; ETA schmäler, Diskalfleck des Vorderflügels noch breiter und Beine dunkler; auf dem Abdomen ist nur die Distalhälfte von Sternit 4 schmutzig- weiß.
Differentialdiagnose. Die neue Unterart unterscheidet sich in mehreren Merkmalen von der Nominatform: ETA breiter und außen konkav gewölbt (bei der Nominatform sehr schmal und trapezförmig mit geradem oder leicht konvexem Außenrand); Apikalfeld schwarz (bei der Nominatform stets mit mehr oder weniger ausgeprägten hellen Strahlen zwischen den Adern); Diskalflecke auf beiden Flügeln wesentlich breiter als bei der Nominatform; auch die Beine _— _ _a_a_ __ zo e EEE er... Abb. 1—10: Imagines der neuen Glasflügler (Belege in Coll. Museum Witt, München). — Abb. 1: Synanthedon stomoxiformis riefenstahli ssp. n., Holotypus ©. Spanien, Provinz Ali- cante, Orcheta 500 m, 18.—22. 5. 1993, H. Riefenstahl leg. — Abb. 2: Synanthedon andrenae- formis tenuicingulata ssp. n., Holotypus ©. Türkei, Avcı Dagları, Girlevik, 39.35 °N, 39.44 °O, 17. 6. 1993, T. Dobrovsky leg. — Abb. 3: Bembecia peterseni sp. n., Holotypus ©. Türkei, Nigde, Ala-Dag, Demirkazik, 1800 m, 4. 8. 1991, P. Kautt leg. — Abb. 4: Bembecia pavicevici dobrovskyi ssp. n., Holotypus ©. Griechenland, Peloponnes, Taygetos Gebirge, Kardamili, 36.31°N, 23.17%0, 15. 7. 1992, T. Dobrovsky leg. — Abb. 5: Bembecia syzcjovi kappadocica ssp. n., Holotypus ©. Türkei, Kappadokien, Yesilóz, 1300 m, larva 7. 6. 1993, ex. 1. Ende August 1993, K. Spatenka leg. — Abb. 6: Bembecia syzcjovi kappadocica ssp. n., Paratypus 9. Türkei, Kappadokien, Yesilöz, 1300 m, larva 7. 6. 1993, ex. 1. Ende August 1993, K. Spatenka leg. — Abb. 7: Synansphecia hera sp. n., Holotypus O. Türkei, Osttaurus, 1 km S Pürem Paß (N von Kahramanmaras), 37.58°N, 36.350, 1500 m, 30. 6.—1. 7. 1991, K. Spatenka leg. — Abb. 8: Dipchasphecia intermedia sp. n., Holotypus ©. Türkei, Taurus- Gebirge, 10 km N Saimbeyli (Hadjin), 1450 m, 36.07.12°O, 38.03.12 °N, 6. 6. 1993 ex larva ex Acantholimon sp., K. Spatenka leg. — Abb. 9: Chamaesphecia kautti sp. n., Holotypus ©. Türkei, Nigde, Ala Dag, Demirkazik, 25.—26. 7. 1991, 1600 m, P. Kautt leg. — Abb. 10: Cha- maesphecia taurica sp. n., Holotypus oc’. Türkei, Südanatolien, Taurus-Gebirge, Camlıyayla (Namrun), 1200 m, 37.11°N, 34.390, 26.—27. 7. 1991, K. Spatenka leg.
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Neue Glasflügler aus Europa und der Türkei
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und das Abdomen sind dunkler; Analbusch schwarz, ohne die für die Nominatform typischen gelben Schuppen; der gelbe Ring auf Tergit 4 ist vergleichbar schmal wie auf Tergit 2 (bei der Nominatform stets deutlich breiter, besonders beim Weibchen); Sternite 4—6 (bei Weibchen nur 4) sind schmutzigweiß (nicht rein weiß wie bei der Nominatform).
Larvalbionomie. Wie bei der Nominatform; die Raupe lebt zweijährig in den Stämmen und Asten von Viburnum lantana (Caprifoliaceae) in lichten Wäldern.
Verbreitung. Bisher nur aus Ostanatolien bekannt (Umgebung von Erzincan und Kars) und aus Armenien (Naturschutzgebiet Chosrov bei Vedi). Das Areal umfaßt wahrscheinlich die ganze Osttiirkei und das südliche Transkaukasien. Unklar bleibt die Frage der Existenz einer Kontaktzone zwischen den beiden bisher bekannten Unterarten. Die Südostgrenze der Verbrei- tung der Nominatform ist wenig bekannt, die südöstlichsten Lokalitäten liegen bei Sofia (Bul- garien) und in Südrußland (Kasan, Simbirsk, Ufa, Orenburg, Samara, Saratow, Sarepta, Uralsk). Bartel (1902) führt auch Kleinasien an, ohne daß hierfür Belegmaterial nachweisbar ist.
Derivatio nominis. Die Benennung erfolgt aufgrund der besonders schmalen Abdominal- cingulation.
Bembecia peterseni sp. n. (Abb. 3)
Material. Holotypus ©, Türkei, Nigde, Ala-Dag, Demirkazik, 1800 m, 4. 8. 1991, P. Kautt leg., coll. Museum Witt, München; Paratypen: 7 © co mit gleichen Daten; 8 o © gleiche Angaben, 25.—26. 7. 1991; 3 © ©, Türkei, Kappadokien, Goreme, 7. 8. 1991; 1 ©, Türkei, Adana, Saimbeyli, 1400 m, 10. 8. 1991; 5 oo, Türkei, Bingöl/Mus, Buglan-Paß, 1600 m, alle P. Kautt leg., coll. Museum Witt, München; I © Türkei, Prov. Tunceli, 15 km N Tunceli, 13.—14. 7. 1992, M. Petersen leg., coll. K. Spatenka (GU Nr. 83-393 E. Blum); 1 © mit glei- chen Daten in coll. Kallies; 8 © © Türkei, Kappadokien, Göreme, 24. 6. 1992, H. Riefenstahl leg. et coll.; 1 © Türkei, Provinz Malatya, Kale, 700 m, 12. 7. 1992, A. Kallies leg. et coll., 1 oO Türkei, € Taurus, Sartauul gec. 1650 m, 36:55 ° N, 33:16:25 > E 222 73577531995 K. Spatenka leg. et coll.; 3 or Türkei, Prov. Erzurum, Karagóbek, 1970 m, 40.10.40? N, 41.26? E, 17. 7. 1996, K. Spatenka leg. et coll., 1 © Türkei, Prov. Agri, Arasgünei Del, Tahir, 2250 m, 39.519 N, 42.25.40” E, 14. 7. 1996, K. Spatenka leg. et coll., 13 or Türkei, Prov. Kars, Kar- gapazari Del., Tasoluk, 1700 m, 40.16? N, 41.35.40" E, 14.—15. 7. 1996, K. Spatenka leg. et coll.
Männchen. Spannweite 16—22 mm. Eine schlanke Art mit relativ schmalen Vorderflügeln. Labialpalpus weißgelb, lateral außen schwarz; Antenne schwarz- braun, subapikal heller, ven- tral braun; Stirn weißgelb; Scheitel schwarz mit ockergelben Haaren; Halskragen ockergelb.
Thorax: schwarz; Patagia lateral ockergelb; Scapularfleck weißgelb; Innenrand der Tegula ockergelb; Metathorax distal zitronengelb. Vorderbein schwarz, -coxa dorsal in ganzer Länge hellgelb, -femur schwarz, ventral hellgelb, -tibia hellgelb, basal und apikal mit schwarzen Punkten, Tarsus hellgelb; Hinterbein: Coxa und Femur schwarz mit langen gelben Haaren, Tibia basal und apikal mit schwarzen Ringen, sonst hellgelb, Tarsus hellgelb mit vereinzelten schwarzen Schuppen, ventral mit schwarzen Dornen.
Vorderflügel: ockergelb mit gut entwickelten Glasfeldern; Costalrand braunschwarz mit hell ockergelben Schuppen zwischen den Adern, Außenrand schmal braunschwarz, Fransen lang braunschwarz, Analrand orangegelb beschuppt, Cubitalstamm braunschwarz, Basalhälfte des Diskalflecks dunkelbraun, Apikalhälfte dunkel ockergelb bis orangegelb, halb so breit wie das Rundfeldchen, Apikalfeld etwa so breit wie das Rundfeldchen, hell ockergelb mit schmal, aber deutlich dunkelbraun beschuppten Adern. Das Keilfeldchen bis zur schwarzen Flügelwurzel reichend, das Längsfeldchen apikal durch die ockergelbe Bestäubung auf etwa 2/3 der Lange reduziert, das Rundfeldchen klein, etwa so hoch wie breit, durch die ockergelb beschuppten Adern in 3 Zellen geteilt, die Räume zwischen den Adern R3—R4, R4—R5, M3—Cul und Cul—Cu2 hell ockergelb beschuppt. Bei frischen Exemplaren sind die Glasfelder mit durch- sichtigen, stark perlmuttartig glänzenden Schuppen belegt. Ventral ist auch auch der Costal- und Analrand des Vorderflügels hell ockergelb.
Hinterflügel: durchsichtig mit sehr schmalem dunkelbraunem Außenrand, dunkelbraunen Adern und Fransen und kurzem, breit-keilförmigem Diskalfleck, der zwischen den Adern M2 und dem Aderstiel M3—Cul nur aus einer einzigen Schuppenreihe besteht.
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Abdomen: schwarz, mit deutlichen, breit zitronengelben Bándern, Hinterrand von Tergit 1 mit undeutlichem gelbem Ring, Tergit 2 in der Distalhälfte gelb, 3 mit schmalem, aber deut- lichem gelbem Hinterrand, 4 in der Distalhálfte, 5 in den distalen 2/3, 6 fast ganz und 7 ganz gelb. Die gelben Bänder auf den Tergiten 4—7 tragen an den Distalrándern je eine Reihe weiß- gelber Schuppen; Analbusch schwarz, medial und lateral zitronengelb. Abdomen lateral áhn- lich wie dorsal, ventral schwarz, die Sternite 2—7 mit gleichmäßig breiten weißgelben Distal- rändern.
Weibchen. Antenne ockergelb mit schwarzer Spitze; Labialpalpen zitronengelb. Patagial- kragen, Innenrand der Tegula und Metathorax breit zitronengelb. Abdomen schwarz, mit sehr breiten zitronengelben Bändern auf den Tergiten 2, 4, 5 und 6, mit breitem, aber kurzem medialen Querband, auch auf dem 3. Tergit, ventral schwarz mit breiten ockergelben Bändern auf den Sterniten 4—6. Vorderrand des Vorderflügels schwarzbraun, lebhaft ockerfarbig bis orange, ebenso wie das Apikalfeld und der Diskalfleck; ETA rundlich, etwa so breit wie das Apikalfeld, in 4 Zellen geteilt, Adern im Apikalfeld schwach braunschwarz beschuppt, Diskal- fleck am Innenrand braunschwarz, alle Glasfelder gut entwickelt. Hinterflügel mit sehr kur- zem und schmalem, nur bis M2 führendem Diskalfleck. Das Weibchen ähnelt den Weibchen von B. fibigeri und B. albanensis, unterscheidet sich aber in vielen Details. B. albanensis hat z. B. kleinere Glasfelder, alle Abdominalránder sind schmaler (12—T6), das PTA beschuppt und die Adern im Apikalfeld sind dicht dunkel bestäubt. B. fibigeri hat schwarze Antennen mit weißlichem subapikalem Fleck, die Tegula sehr schmal gelb begrenzt, die Abdominal- ränder 1 und 3 sehr undeutlich, die Hintertibia fast ohne dunkle Schuppen (bei B. peterseni mit deutlichem schwarzem distalem Fleck), den Costalrand des Vorderflügels ockergelb, braun bestäubt, die dunklen Adern im Apikalfeld sehr deutlich, den Diskalfleck im Hinterflügel breiter und länger (bis M3—Cul).
Variabilität. Bei einigen, besonders bei leicht abgeflogenen Exemplaren sind die gelben Abdo- minalbánder schmäler (besonders auf Tergit 3), und der undeutliche gelbe Ring auf Tergit 1 fehlt oft. Bei einigen Exemplaren ist der Diskalfleck des Vorderflügels breiter oder sogar ganz gelb oder orangegelb. Bei Exemplaren mit orangegelbem Diskalfleck ist auch das Apikalfeld orangegelb.
Genitalapparat © (Abb. 11). Individuell sehr variabel, im allgemeinen aber ähnlich dem von B. iberica Spatenka, 1992; Valve mittelbreit, mit sehr schmaler bedornter Fläche; Crista sacculi gespalten, ihr dorsaler Processus entweder mächtig wie bei B. iberica oder sehr kurz; Gnathos doppelt, mit ovalen oder langgezogenen Lateralkanten, die cranialen lateralen Cristen ent- weder in einer Höhlung verschmolzen oder proximal stark genähert, jedoch nicht ganz ver- schmolzen.
Differentialdiagnose. Die neue Art ist phylogenetisch mit B. iberica verwandt, ähnelt aber auch weiteren Arten der Gattung Bembecia, wie z. B. B. zuvandica Gorbunov, 1987, B. fibigeri Lastüvka € Lastúvka, 1994, B. ichneumoniformis ([Denis & Schiffermüller], 1775), B. alba- nensis (Rebel, 1918) und B scopigera (Scopoli, 1763). B. ichneumoniformis und B. scopigera unterscheiden sich deutlich durch das große Rundfeldchen (5—6 Zellen), schmale gelbe Abdo- minalringe und weitere Merkmale. Die genitalmorphologisch verwandte B. iberica unterschei- det sich habituell durch den teilweise ziegelroten Diskalfleck, das rostbraune Apikalfeld und den rötlichen Analrand des Vorderflügels. Sie hat auch die Räume zwischen den Adern R3—R4 und Cul—Cu2 schwarz. B. albanensis hat bei einigen Exemplaren ähnlich gefärbte Vorderflügel und ähnlich geformte Glasfelder, die Hinterränder der Tergite sind jedoch nur schmal und blaßgelb. B. zuvandica ist noch heller gelb, hat den Analrand des Vorderflügels hell ockergelb beschuppt und die medialen Adern im Apikalfeld gelb und nicht schwarz beschuppt. Sie hat auch ein größeres Rundfeldchen, das breiter als das Apikalfeld ist und in 4 statt 3 Zellen geteilt ist. Sehr ähnlich ist auch die spanische und südfranzösische B. fibigeri, die nur ein wenig robuster ist, der Farbton der Beine und Abdominalringe ist satter, das Api- kalfeld leicht mit schwarzen Schuppen durchmischt und das Rundfeldchen größer (4 Zellen). B. fibigeri unterscheidet sich ferner ganz deutlich im Bau des männlichen Genitalapparates, der eine einfache Gnathos und eine ungespaltene Crista sacculi besitzt.
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Bionomie und Habitat. Die Raupe ist einjáhrig und lebt offensichtlich in den Wurzeln einer Ononis sp. (Fabaceae), die der mitteleuropáischen O. spinosa ähnelt. Sie legt ihre Gänge dicht unter der Rhizodermis an. Vor der Verpuppung baut sie aus miteinander versponnenen Spá- nen des Wurzelstockes ein manchmal mehrere cm langes Röhrchen. Die Imago schlüpft im Juli und August. Die Art bewohnt trockene Ruderalflächen, z. B. Weideplätze, Straßenränder, Obstgärten und die Umgebung von Bewässerungsanlagen und Brunnen.
Verbreitung. Im mittleren und östlichen Anatolien anscheinend weit verbreitet.
Derivatio nominis. Die neue Art ist Herrn M. Petersen (Pfungstadt), einem ausgezeichneten Sesienkenner, gewidmet.
Bembecia pavicevici dobrovskyi ssp. n. (Abb. 4)
Material. Holotypus ©, Griechenland, Peloponnes, Taygetos Gebirge, Kardamili, 36.31° N, 23.17° O, 15. 7. 1992, T. Dobrovsky leg., coll. Museum Witt, München; Paratypen: 2 o © dito, 13. 7. 1992; 1 © 15. 7. 1992, alles T. Dobrovsky leg. et coll. (Praha); 1 ©, dito, 12. 7. 1992, Krejcik leg. et coll. (Mlada Boleslav); 1 ©, Griechenland, Peloponnes, Taygetos, Tseria, 36.53 ° N, 22.13° O, 14. 7. 1992, T. Dobrovsky leg. et coll.; 3 © ©, Taygetos, Umg. Saidona, 500 m, 9. 7. 1994, A. Lingenhöle leg., coll. K. Spatenka; 10 © © mit gleichen Daten, 17. 7. 1995, A. Lingenhöle leg. et coll.; 10 © ©, Taygetos, 15 km W Mistras, 400 m, A. Lingenhöle leg. et coll.; 8 oo, Taygetos, Schlucht bei Exohori, 450 m, 22. 7. 1995, A. Lingenhöle leg., coll. K. Spatenka; 30 © © mit gleichen Daten in coll. A. Lingenhöle.
Männchen. Spannweite 24—27 mm. Das Männchen der neuen Unterart unterscheidet sich in folgenden Merkmalen von B. p. pavicevici ToSevski, 1989: der schmutzigweiße Fleck auf der Antenne nimmt nur !/s der Antennenlänge ein (bei der Nominatform mindestens ein Drit- tel); die Flügel sind deutlich dunkler bestäubt. Vorderflügel: das Längsfeld (PTA) ist durch die dunkelbraune Bestäubung stark reduziert, der Analrand deutlich breiter, der Diskalfleck dunkelbraun, nur mit dunkel ockergelbem Außenrand (bei der Nominatform ist die äußere Hälfte des Diskalfleckes ockergelb), das Rundfeldchen (ETA) ist sehr klein, 3-zellig, oval, halb so breit wie das Apikalfeld, dicht mit ockergelben und perlmuttartigen Schuppen bestáubt (bei der Nominatform 4—5 zellig, nur 1,5 x schmaler als das Apikalfeld); das Apikalfeld ist dunkelbraun, nur mit 3 kurzen dunkel ockergelben Strahlen zwischen den Adern RS—M1, M1—M2 und M2—M3 (bei B. p. pavicevici ist das Apikalfeld vorwiegend ockergelb). Auch der Hinterflügel ist dunkler, mit sehr breitem dunkelbraunem Außenrand, breiter als die Länge der Fransen (bei der Nominatform halb so breit wie die Fransen). Auch der Diskalfleck des
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Abb. 11—17: Genitalpráparate. — Abb. 11: Bembecia peterseni sp. n., Paratypus ©. Türkei, Nigde, Ala-Dag, Demirkazik, 1800 m, 4. 8. 1991, P. Kautt leg. (Gen.práp. O. Gorbunov 95-15). Maßstab: 0.5 mm. — Abb. 12: Synansphecia hera sp. n., Paratypus ©. Türkei, Osttaurus, 1 km S Púrem Paß (N von Kahramanmaras), 37.58 N, 36.350, 1500 m, 30. 6.—1. 7. 1991, K. Spatenka leg. (Gen.präp. O. Gorbunov 93-05). Maßstab: 0.5 mm. — Abb. 13: Dipchasphe- cia intermedia sp. n., Paratypus ©. Türkei, Taurus-Gebirge, 10 km N Saimbeyli (Hadjin), 1450 m, 36.07.12°O, 38.03.12 °N, 6. 6. 1993 ex larva ex Acantholimon sp., K. Spatenka leg. (Gen.práp. I. ToSevski 822). — Abb. 14: Dipchasphecia intermedia sp. n., Paratypus 9. Türkei, Taurus-Gebirge, 10 km N Saimbevli (Hadjin), 1450 m, 36.07.12°O, 38.03.12°N, 6. 6. 1993 ex larva ex Acantholimon sp., K. Spatenka leg. (coll. Gen.präp. O. Gorbunov 96-03). Maßstab: 0.5 mm. — Abb. 15: Chamaesphecia kautti sp. n., Paratypus O. Türkei, Nigde, Ala- Dag, Demirkazik, 25.—26. 7. 1991, 1600 m, P. Kautt leg. (Gen.práp. O. Gorbunov 93-07). Maßstab: 0.5 mm. — Abb. 16: Chamaesphecia kautti sp. n., Paratypus 9. Türkei, Nigde, Ala- Dag, Demirkazik, 20. 7. 1996, K. Spatenka leg. et coll., 1600 m, (Gen.práp. O. Gorbunov 96-06). Maßstab: 0.5 mm. — Abb. 17: Chamaesphecia taurica sp. n., Paratypus ©. Türkei, Südanatolien, Taurus-Gebirge, Camliyayla (Namrun), 1200 m, 37.11 9N, 34.390, 26. 7. 1991, K. Spatenka leg. (Gen.präp. I. ToSevski 762).
Neue Glasflügler aus Europa und der Türkei 49
Hinterflügels ist kräftiger, breit keilförmig und ohne gelbe Schuppen (bei der Nominatform schwächer, zwischen den Adern M2—M3 sehr schmal und in der Außenhälfte mit hell ocker- gelben Schuppen).
Weibchen. Spannweite 26—28 mm; ebenfalls dunkler und robuster als die Nominatform; der Analrand des Vorderflügels mehr rötlich; die Antenne vorwiegend gelb, nur an der Basis und der Spitze dunkler; mit breiten zitronengelben Bändern auf den Abdominaltergiten 2—6; der Analbusch mit 2 länglichen gelben Strahlen. Es ähnelt dem Weibchen der Individualform „kalavrytana“ von Bembecia albanensis (Rebel, 1918), unterscheidet sich aber in einigen wich- tigen Merkmalen. Der Scheitel ist bei ,,kalavrytana“ rostbraun, bei B. p. dobrovskyi ssp. n. schwarz mit gelben Haaren; die Glasfelder sind bei „kalavrytana“ noch stärker reduziert, ETA und PTA fehlen, das ATA ist sehr schmal und kurz. Der Hinterflügel ist bei „kalavrytana“
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50 K. Spatenka
im Apex sehr breit schwarz bestäubt, der Diskalfleck rot und endet auf dem Aderstiel M3—Cul, bei B. p. dobrovskyi ssp. n. hingegen auf der Verzweigung von M3—Cul.
Kleinere Unterscheidungsmerkmale weisen auch die männlichen Genitalien auf. Die für B. p. pavicevici typische kahle subapikale Partie auf der Crista sacculi fehlt bei der neuen Unterart, der ganze Dorsalrand ist hier dicht mit dicken, stark sklerotisierten Seten besetzt. Diese bedecken basal den Ventralrand des mit Seten bestandenen Teiles der Valve (diese Seten fehlen bei B. p. pavicevici). Crista sacculi subapikal breit durch eine Reihe dicker Borsten mit der bedornten Fläche der Valve verbunden. Diese Verbindung ist bei B. p. pavicevici sehr schwach und wird durch dünnere Borsten gebildet.
Variabilität. Vereinzelt wurden in kühlen Schluchten auch ganz schwarze Exemplare gefangen.
Bionomie und Habitat. Die Larvalbionomie ist unbekannt. Die Raupe lebt offensichtlich, ähnlich wie die von B. p. pavicevici, in den Wurzeln von Coronilla emerus (Fabaceae). Trockene Waldsteppen und Schluchten in südlichem Taygetos-Gebirge.
Verbreitung. Bisher nur von den südlichen Abhängen des Taygetos-Gebirges bekannt. Die Nominatform ist bisher vom Peloponnes nicht bekannt. Ihr bisher bekanntes Verbreitungs- areal zieht sich vom Parnassos-Gebirge in Südgriechenland, über Mazedonien, SW-Bulgarien, die Inseln Korfu und Hvar entlang der dalmatinischen Küste bis nach Istrien und Slowenien. Sie kommt vermutlich auch in Albanien und in NO-Italien vor, von wo Belegmaterial bisher freilich fehlt. Die Art kommt auch auf dem Nord-Peloponnes bei Kalavrita vor (mehrere Exemplare leg. Lingenhöle, 1994). Die Exemplare aus diesem Gebiet unterscheiden sich sowohl von denen aus dem Taygetos als auch von denen vom Festland und von den dalmatini- schen Inseln. Die schwarzen Zeichnungen der Fligel sind etwas breiter als bei der Nominat- form, der helle Fleck auf der Antenne ist von normaler Breite. Auffallend ist die dichte dunkelockergelbe Bestäubung des Apikalfeldes und des Hinterrandes des Vorderflügels. Mit Schuppen gleicher Farbe sind auch alle Glasfelder des Vorderflügels bestäubt. Die taxonomi- sche Stellung dieser Form bleibt bisher unklar. Ähnliche Merkmale (rotorange bestäubte Glas- felder) weist die aus dem gleichem Gebiet von Sheljuzhko beschriebene Form kalavrytana von B. albanensis auf.
Derivatio nominis. Die neue Unterart ist nach ihrem Entdecker benannt.
Bembecia syzcjovi kappadocica ssp. n. (Abb. 5, 6)
Material. Holotypus ©, Türkei, Kappadokien, Yesilöz, 1300 m, larva 7. 6. 1993, ex 1. Ende August 1993, K. Spatenka leg., coll. Museum Witt, München; Paratypen: 4 00,3 Q 9 mit gleichen Angaben, coll. Museum Witt, München; 1 ©, 1 Q mit gleichen Daten in coll. O. Gorbunov; 2 © © Türkei, Kappadokien, Góreme, 24.—31. 8. 1994, 1000 m, A. Lingenhöle leg., coll. K. Spatenka; 10 0 0,5 9 9 gleicher Fundort, 9. 1995, A. Kallies leg. et coll.
Männchen. Spannweite 27 mm. Unterscheidungsmerkmale von der Nominatform: Antenne hellbraun mit schwarzer Spitze (in der Nominatform schwarz); Patagia gelb, nur in der Mitte mit einzelnen schwarzen Schuppen (bei der Nominatform schwarz, nur lateral mit einzelnen gelben Schuppen); der Diskalfleck des Hinterflügels erreicht nicht wie bei der Nominatform den Aderstiel M3 —Cul; der schwarze Fleck auf der Hintertibia undeutlich oder fehlend. Auf- fallend stärker gelb bestäubt ist das Abdomen: die Tergite 2—3 sind distal breit gelb gerandet und die Tergite 4—7 ganz gelb (bei der Nominatform sind nur die Tergite 4, 6 und 7 gelb, 2 und 5 nur mit sehr schmalen gelben Ringen und 3 ganz schwarz). Sternit 2 ist breit gelb gerandet (bei der Nominatform schwarz).
Weibchen. Sehr vom Männchen verschieden; Antenne, Labialpalpus, Kopf, Thorax und beschuppte Teile der Flügel schwarz; Stirn schmutziggelb; Vordertibia ventral mit braunen Schuppen; Vorderrand des Vorderflügels ventral mit schmutziggelbem Strich; Vorderflügel ähnlich wie beim Männchen mit extrem großen Glasfeldern, Apikalfeld schmal, der Analrand und die Adern freilich schwarz und der Diskalfleck breiter. Hinterflügel unbeschuppt, mit schwarzem Außenrand, Adern und Fransen, der Diskalfleck schwarz, den Aderstiel M3—Cul erreichend. Das Abdomen ist schwarz, die Tergite 4—6 mit Ausnahme der schmalen Vorder- ränder zitronengelb, die hinteren 2/3; der Sternite 4—6 zitronengelb.
Neue Glasflügler aus Europa und der Türkei 51
Variabilität. Bei einigen Männchen ist die Antenne ganz schwarz, bei einem Weibchen die Abdominaltergite zitronen- und die Sternite orangegelb, bei einem Stück sogar auch die Ter- gite orangegelb.
Bionomie und Habitat. Die Raupe lebt in der Wurzel einer hochwachsenden, gelbblühenden Astragalus sp. (Fabaceae), die bisher noch nicht determiniert werden konnte. Sie ähnelt ande- ren, ebenfalls von Glasflüglern präferierten Astragalus-Arten, wie A. sieversianus, A. tricho- calyx, A. finitimus, A. shahrudensis, A. dipsaceus, A. lacei usw. In Kappadokien kommt diese Art sehr lokal unter A. dipsaceus auf trockenen steppenartigen Abhängen in schmalen tiefen Tälern vor.
Derivatio nominis. Die neue Unterart wird nach ihrem Fundgebiet Kappadokien benannt.
Synansphecia hera sp. n. (Abb. 7)
Material. Holotypus ©, Türkei, Osttaurus, 1 km S Pürem Paß (N von Kahramanmaras), 37.58° N, 36.35 ° O, 1500 m, 30. 6.—1. 7. 1991, K. Spatenka leg., coll. Museum Witt, München; Paratypen: 1 © mit gleichen Daten, coll. K. Spatenka; 1 ©, Türkei, Provinz Adana, Taurus- Gebirge, 10 km N Saimbeyli, 38.06° N, 36.08° O, 1450 m, 29. 6. 1991, K. Spatenka leg. et coll. (Genitalpráparat Gorbunov Nr. 93-05) ; 4 o ©, Türkei, Konya, 50 km S Beysehir, Umgebung Bademli, 1300 m, 8. 7. 1992, A. Lingenhöle leg., coll. K. Spatenka, 10 © © mit gleichen Anga- ben, A. Lingenhöle leg. et coll., 1 © mit gleichen Angaben A. Kallies coll.; 1 © Türkei, Konya, Beysehir-See, 20 km W Beysehir, 7. 7. 1992, A. Lingenhöle leg. und coll.
Männchen. Spannweite 23 mm. Im allgemeinen ähnlich S. mannii (Lederer, 1853), im Ver- gleich zu dieser aber auffallend größer und mit größeren Glasfeldern. Antenne schwarz, außen subapikal mit einzelnen ockergelben Schuppen. Labialpalpus ockergelb, das erste und zweite Glied noch mit weißen Schuppen bestäubt, außen schwarz, mit langen haarförmigen Schup- pen; Stirn schneeweiß; Scheitel schwarz mit langen gelbgrauen Haaren; Halskragen ockergelb.
Thorax: schwarz, Tegula innen mit blaßgelben Haaren und einzelnen Schuppen begrenzt; Pleura ockergelb. Beine: Vordercoxa schwarz, dicht mit ockergelben haarförmigen Schuppen überstäubt, so daß die Grundfärbung kaum sichtbar ist; Vorderfemur und -tibia ockergelb und schwarz gemischt. Hintercoxa und -femur schwarz, ventral mit langen blaßgelben Haaren; Tibia ockergelb, beim zweiten Spornpaar mit schwarzem Ring; Sporne ockergelb; Tarsus ockergelb, das letzte Tarsomer schwarz.
Vorderflügel: Ränder schwärzlich; Diskalfleck schwarz, halb so breit wie das Rundfeldchen (ETA); Apikalfeld schwärzlich mit hell ockergelben Strahlen zwischen den Adern; die Glas- felder gut entwickelt, leicht mit ockergelben und weißen Schuppen überstäubt; ETA höher als breit, mäßig konkav gewölbt, schmaler als das Apikalfeld. Ventral: Costal- und Analrand, Cubitalstamm, Adern im Rundfeldchen und Strahlen im Apikalfeld zitronengelb.
Hinterflügel: hyalin mit schwarzbraunem Außenrand, schwarzen Adern und schwarzem keilförmigem Diskalfleck, der den Aderstiel M3—Cul erreicht; Fransen grau, lang. Ventral: Vorderrand und Adern zitronengelb; Außenrand und Diskalfleck mit einzelnen zitronengelben Schuppen.
Abdomen: schwarz, die Hinterränder der Tergite 2, 4 und 6 schmal weiß, die Tergite 3—7 noch dicht gelb überstäubt; auf Tergit 2 nur medial spárliche ockergelbe Schuppen; Analbusch schwarz, in der Mitte breit, lateral schmal goldgelb. Lateral über alle Tergite eine durch- laufende goldgelbe Linie. Ventral: schwarz, die Sternite 2 und 3 an den Hinterrändern dünn, 4—7 in fast ganzer Breite dicht goldgelb bestäubt; Analklappen goldgelb.
. Differentialdiagnose. S. hera ist nahe verwandt und auch ähnlich mit S. mannii vom Balkan und aus dem Pontus. Diese Art ist im Durchschnitt kleiner (15—17 mm) und dunkler, die gelben Partien sind bei ihr dunkel statt hell ockergelb, was besonders im Apikalfeld auffällt; das erste Palpusglied ist dorsal schwarz, mit gelber Beimischung (bei S. hera gelb mit weißen Schuppen); die Stirn hellgelb bis ockergelb (nicht weiß); die Antenne ventral hellbraun (nicht schwarz); das ETA ist bei S. mannii sehr schmal, schmaler als der Diskalfleck, halb so breit wie das Apikalfeld; das Abdomen ist ventral fast ganz schwarz, nur mit einzelnen ockergelben
52 K. Spatenka
Schuppen; der Analbusch schwarz, nur bei einigen Exemplaren lateral mit wenigen ocker- gelben Schuppen, selten auch medial.
Genitalapparat © (Abb. 12). Sehr ähnlich dem von S. mannii, die Valve subapikal ein wenig breiter und apikal weniger zugespitzt.
Bionomie und Habitat. Die Bionomie ist unbekannt. Nach dem Charakter der Biotope ist zu vermuten, daß die Raupe ähnlich der verwandten S. mannii in einer Geranium sp. (Gerania- ceae) lebt. Waldsteppen mit sehr reicher Vegetation, Lichtungen in Nadel- und Laubwäldern.
Verbreitung. Bisher nur von den genannten Lokalitäten bekannt.
Derivatio nominis. Die neue Art wird nach der Gattin und Schwester des griechischen Gottes Zeus, der Hüterin der Ehe, benannt.
Dipchasphecia intermedia sp. n. (Abb. 8)
Material. Holotypus ©, Türkei, Taurus-Gebirge, 10 km N Saimbeyli (Hadjin), 1450 m, 36.07.12° O, 38.03.12° N, 6. 6. 1993 ex larva ex Acantholimon sp., K. Spatenka leg., coll. Museum Witt, München; Paratypen: 5 oo, 4 Q Q mit gleichen Daten; 30 oro Türkei, Taurus-Gebirge, Kan-Paß, 1565 m, 38.18° N, 36.21° O, 29.—30. 6. 1991, K. Spatenka leg. et coll.; 2 © © mit gleichen Daten coll. Z. Lastuvka (Brno, Tschechische Republik); 14 oo, Türkei, Pontus-Gebirge, Gümüs, 1000 m, 40.49° N, 35.10° O, 5. 7. 1991, K. Spatenka leg. et coll; 2 oo mit gleichen Daten, coll. Z. Lastuvka; 2 © ©, Türkei, Kappadokien, Karain, 1200 m, 30.36° N, 35.04 ° O, 3. 7. 1991, K. Spatenka leg. et coll.; 1 ©, gleiche Angaben in coll. A. Kallies; 1 ©, Kappadokien, Goreme, 1100 m, 20.—28. 6. 1992, H. Riefenstahl und M. Petersen leg., coll. A. Kallies, 1 © mit gleichen Daten in coll. H. Riefenstahl.
Männchen. Spannweite 13,5—21 mm. Labialpalpus weiß, das dritte Glied schwarz durch- mischt, lateral mit länglichem schwarzem Strich; Antenne schwarz, Pedicellus und Scapus ventral ockergelb; Stirn weiß, medial mit einzelnen braunen Schuppen; Scheitel schwarz mit einzelnen rostbraunen Schuppen; Halskragen rostbraun.
Thorax: Schwarz; Scapularfleck sehr undeutlich, nur aus einigen weißlichen Schuppen bestehend oder fehlend; Tegula am Innenrand begrenzt ockergelb; Metathorax mit 2 Gruppen von langen weißen Haaren; Thorax lateral mit großem weißlichem oder ockergelbem Axillar- fleck. Vordercoxa weiß, -femur, - tibia und -tarsus braun; Tibia am Distalrand ockergelb; Tarsomeren an den Distalrändern weiß; Hinterbein braun, -tibia dorsal, besonders im Medial- teil, dicht weiß behaart; Sporne weißlich; Tarsomeren distal weißlich.
Vorderflügel: dunkelbraun mit sehr kleinen Glasfeldern; Costalrand vor.dem Apex gelb- weiß, das breite braune Apikalfeld mit kurzen weißgelben Strahlen zwischen den Adern; Diskalfleck braunschwarz, breiter oder ebenso breit wie das ETA; alle Glasfelder sehr klein, bei frischen Exemplaren dicht mit weißlichen Schuppen bedeckt; ETA im typischen Fall punktförmig, höher als breit oder rundlich, durch die Adern in 3 Zellen geteilt. Ventral: Ränder und Apikalfeld dicht schmutzigweiß beschuppt.
Hinterflügel: durchsichtig mit schmalem dunkelbraunem Außenrand, braunen Adern, Fran- sen und bei M2 nach unten gewinkeltem Diskalfleck.
Abdomen: dunkelbraun, die Tergite 2 und 4 breit schmutzigweiß gerandet, Tergit 6 am Distalrand schmal weißlich begrenzt; Analbusch braunschwarz, lateral an der Basis weißlich. Das ganze Abdomen bei frischen Exemplaren leicht mit schmutzigweißen Schuppen bestäubt. Die breiten Hinterränder der Tergite 2, 4, 6 und 7 lateral weißlich. Ventral: braun, Sternit 2 distal breit schmutzigweiß, die Sternite 3—7 mit mehr oder weniger deutlichen, schmalen schmutzigweißen Hinterrändern. Das ganze Abdomen ventral mit vereinzelten weißen Schuppen.
Weibchen. Robuster, mit dickem Abdomen; Stirn schneeweiß; Innenrand der Tegula am Prothorax weißgelb, Meso- und Metathorax breit weiß begrenzt; Prothorax mit deutlicher, ockergelber mediodorsaler Linie. Abdomen dunkelbraun, Tergite 2 und 6 mit schmalem, 4 mit breitem weißlichem Hinterrand; Analbusch mit 2 sublateralen weißlichen Strahlen. Ventral: Sternit 2 braun, dicht weiß überstäubt, Sternite 4—6 mit schmalen weißen Distalrándern, Sternit 3 mit einzelnen weißen Schuppen am Distalrand.
Neue Glasflügler aus Europa und der Türkei 33
Variabilität. Im Ausmaß der hellen Beschuppung und in der Größe der Glasfelder relativ stark variabel. In Populationen aus dem Taurus-Gebirge kommen selten Exemplare mit größerem ETA und hellerem Apikalfeld vor; bei einem Exemplar aus Kappadokien sind die Labial- palpen fast ganz weiß, die Tegula breit weiß beschuppt, der Costal- und Analrand des Vorder- flügels dicht weißlich überstäubt und das Apikalfeld heller, mit längeren weißlichen Strahlen zwischen den Adern. Die drei bekannten Exemplare aus Bulgarien sind dunkler, mit größeren Glasfeldern, die Weibchen mit nur zwei schmalen weißlichen Ringen auf den Tergiten 2 und 4, mit sehr dunklem Apikalfeld und weniger ausgeprägten weißlichen Strahlen im Analbusch, Sternit 2 weißlich, sonst nur 4 distal schmal weißlich begrenzt. Die taxonomische Stellung der Exemplare aus Bulgarien ist bisher nicht ganz klar, weshalb diese nicht in die Typenserie auf- genommen wurden.
Genitalapparat ~ (Abb. 13). Ähnlich den verwandten Arten. Die ganze Gattung ist genital- morphologisch sehr einheitlich.
Genitalapparat Q (Abb. 14). Wie bei den verwandten Arten.
Differentialdiagnose. Die neue Art ähnelt Dipchasphecia lanipes und D. krocha und bildet zwischen diesen in vielen Merkmalen einen Übergang. D. lanipes aus Südbulgarien ist bisher leider nur in 4 Exemplaren bekannt, die sich aber konstant und deutlich von der neu beschrie- benen Art unterscheiden. D. lanipes hat ein großes ovales, in 5 Zellen geteiltes Rundfeldchen, ein sehr breites weißgelbes Band auf dem Tergit 4, der Diskalfleck des Vorderflügels ist nur halb so breit oder schmaler als das ETA, der Thorax trägt einen großen weißlichen Scapular- fleck, die helle Begrenzung der Tegula fehlt, das Abdomen ist ventral vollständig weißgelb bestáubt, ohne deutliche Ringe. Die Larvalbionomie von D. /anipes ist unbekannt, die Raupe lebt aber offensichtlich nicht in Acantholimon, sondern eher in einer Limonium-Art (Plum- baginaceae). D. krocha steht der neuen Art noch wesentlich näher. Sie ist aber deutlich kleiner (Spannweite 10—11,5 mm), hat das Apikalfeld konstant sehr hell, das Abdomen dorsal mit sehr schmalen weißlichen Ringen auf den Tergiten 2, 4 und 6 (oder nur auf 2 und 4), ventral mit schmalen weißen Distalrändern auf den Sterniten 2—7. D. krocha lebt ebenfalls in Acantholimon, aber in einer anderen, sehr kleinen Art. Die Futterpflanzen von D. inter- media sp. n. und D. krocha wurden bisher leider nicht genau determiniert, da es sich um eine taxonomisch sehr komplizierte Gattung handelt.
Bionomie. Die Raupe ist einjährig und lebt in den holzigen Wurzeln einer kugelförmigen, dornigen, rotblühenden Acantholimon sp., manchmal mehrere Raupen in einer Pflanze. Vor der Verpuppung bauen die Raupen lange, von innen fein ausgesponnene Röhrchen, in denen sie sich auch verpuppen. Die Imagines treten in der Natur im Juni und Anfang Juli auf. Sie fliegen in den späten Nachmittags- und frühen Abendstunden (16—19 Uhr) und sind zu dieser Zeit auch sexuell aktiv.
Habitat. Trockene steinige Plätze mit spärlicher dorniger Steppenvegetation mit im allgemei- nen spärlicher Insektenfauna.
Verbreitung. Türkei: Pontus (Gümüs), Taurus (Saimbeyli, Kan-Paß, Malatya, Kayseri), Kappa- dokien; Süd- und Südost-Bulgarien: Sliven, Schwarzmeerküste südlich von Burgas.
Derivatio nominis. Die Benennung erfolgt in Berücksichtigung der Tatsache, daß die neue Art eine vermittelnde Stellung zwischen den Arten D. lanipes und D. krocha einnimmt.
Chamaesphecia kautti sp. n. (Abb. 9)
Material. Holotypus ©, Türkei, Nigde, Ala Dag, Demirkazik, 25.—26. 7. 1991, 1600 m, P. Kautt leg., coll. Museum Witt, München; Paratypen: 24 oo 1 Q P. Kautt leg., coll. K. Spatenka; 3 Q 2 © dtto, 20. 7. 1996, K. Spatenka leg. et coll.
Männchen. Spannweite 22 mm. Kopf: Labialpalpus dunkelbraun, 1. und 2. Glied dorsal und innen elfenbeinfarben durchmischt, 3. elfenbeinfarben mit braunen Schuppen; Stirn hellbraun mit perlmuttartigem Glanz, vor dem Auge mit weißem Saum; Scheitel schwarz; Antenne
54 K. Spatenka
braunschwarz, Pedicellus und Scapus ventral elfenbeinfarben; Halskragen dorsal rostbraun, lateral ockergelb.
Thorax: schwarz; Patagia dunkelbraun mit starkem Glanz; Tegula innen schmal ockergelb gerandet; Metathorax am Distalrand mit einzelnen ockergelben Schuppen und weißgelben Haaren und Schuppen; Scapularfleck schmutzigweiß; Axillarfleck ockergelb. Beine: Vorder- coxa braunschwarz, caudal am Rand weiß, Femur, Tibia und Tarsus dunkelbraun. Hinterbein dunkelbraun, Tibia beim ersten Spornpaar mit breitem weißem Ring und am Distalrand mit weißen und ockergelben Schuppen.
Vorderflügel: dunkelbraun; Costalkante ockergelb; Cubitalstamm und Analrand mit sehr spärlichen ockergelben Schuppen; im Apikalfeld kurze blaßgelbe Strahlen zwischen den Adern; das Keilfeldchen (ATA) reicht fast bis zur Flügelwurzel; das Längsfeld bis 2/3 der Distanz zum Diskalfleck; das Rundfeldchen (ETA) groß, oval, durch die Adern in 5 Zellen geteilt, die erste Zelle ist vom Costalrand teilweise mit ockergelben Schuppen bestäubt; die Adern im ETA sind ebenfalls teilweise mit ockergelben Schuppen bestáubt; ETA etwa doppelt so breit wie das Apikalfeld und dreimal so breit wie der Diskalfleck. Ventral: Ränder und Adern blaßgelb bestäubt.
Hinterflügel: unbeschuppt, mit braunen Adern, schmalem dunkelbraunem Außenrand und braunen Fransen; Diskalfleck dunkelbraun, rechteckig, dünn auf die Ader M2 auslaufend. Vorderrand und Adern ventral weißgelb durchmischt.
Abdomen: dunkelbraun, mitteldick, mit schmalem Analbusch; Tergite 4 und 6 am Hinter- rand schmal weiß gerandet; am Hinterrand des Tergites 7 einzelne schmutziggelbe Schuppen; im dunkelbraunen Analbusch lateral an der Basis und medial einige ockergelbe Schuppen. Ventral schwarzbraun, die Distalránder der Sternite 4—7 mit weißen Schuppen.
Weibchen. Noch dunkler als das Männchen; Vorderflügel: Längsfeld braunschwarz; Rundfeld- chen klein, vierzellig, die obere Zelle mit braunschwarzen und blaßgelben Schuppen bestäubt, die untere Zelle nur rudimentär ausgeprägt; Apikalfeld etwa so breit wie ETA, braunschwarz, nur mit vereinzelten ockergelben Schuppen; Hinterbein braunschwarz, nur lateral mit weiß- lichem Strich am ersten Spornpaar, dorsal beim ersten Spornpaar und am Distalrand mit eini- gen weißlichen Schuppen; Abdomen schwarzbraun, nur Tergit 4 am Hinterrand weißgelb ~ umrandet. Sternit 4 am Hinterrand mit einer Reihe weißer Schuppen, 6 mit vereinzelten weißen Schuppen.
Variabilität. Nur bei den Männchen beurteilt, da nur wenige Weibchen bekannt sind. Bei man- chen Männchen ist die ockergelbe Mediallinie auf dem Abdomen gut sichtbar, die von den Fleckchen auf den Tergiten 3—6 gebildet wird. Bei solchen Exemplaren können auch ganz ver- einzelte weiße Schuppen am Hinterrand des Tergites 2 und eine ganz kurze ockergelbe Medial- linie auf dem Thorax vorhanden sein. Einige Männchen haben fast schwarze Labialpalpen, manche wieder einen nicht rechteckigen, sondern leicht keilförmigen Diskalfleck des Hinter- flügels.
Genitalapparat & (Abb. 15). Ähnelt dem von Ch. bibioniformis (Esper, 1800); Valve lang- gezogen, kahle Fläche groß, Crista sacculi breit, einfach, Scopula fehlend, Crista gnathi sehr niedrig und kurz.
Genitalapparat © (Abb. 16). Ähnlich wie bei den verwandten Arten.
Differentialdiagnose. Ch. kautti sp. n. ist nahe verwandt mit den Arten der Ch. bibioniformis- Gruppe und ähnelt aus dieser besonders Ch. taurica sp. n. Ferner ähnelt sie habituell auch Ch. guriensis (Emich von Emöke, 1872) und Ch. kistenjovi Gorbunov, 1991, aus Transkauka- sien. Ch. taurica unterscheidet sich schon auf den ersten Blick durch die Gestalt: sie ist kleiner, schlanker und hat größere Glasfelder des Vorderflügels. Sie unterscheidet sich unter anderem auch durch weitere Details, so z. B. den schneeweißen Labialpalpus (bei Ch. kautti sp. n. braun), die außen ockergelbe Antenne (bei Ch. kautti sp. n. schwarzbraun), den schneeweißen Scapularfleck (bei Ch. kautti sp. n. ockergelb), die schneeweiße Vordercoxa (bei Ch. kautti sp. n. braunschwarz, nur weiß umrandet), das sehr schwach entwickelte braunschwarze Apikalfeld (bei Ch. kautti sp. n. breit, mit kurzen ockergelben Strahlen), den strichförmigen Diskalfleck im Hinterflügel (bei Ch. kautti sp. n. breit), die weißen Ringe auf den Tergiten 2, 4 und 6 (bei Ch. kautti sp. n. nur auf 4 und 6), das weiße Abdominalsternit 4 (bei Ch. kautti sp. n. braun-
Neue Glasflügler aus Europa und der Türkei 55
schwarz). Die beiden obengenannten transkaukasischen Arten gehören in die Ch. empiformis- Gruppe, haben also keinen hellen Scapularfleck, den Thorax lateral dunkel und einige Abdo- minaltergite auf der ganzen Oberfläche diffus weißlich oder weißgelb bestäubt.
Bionomie und Habitat. Die Raupe ist wahrscheinlich nur einjährig und lebt in dicken Wurzeln von Euphorbia kotschgiana (Euphorbiaceae). Diese mächtige Pflanze ist in den schotterigen Anschwemmungen im Bachtal und an den kahlen Kalkfelsen oberhalb von Demirkazik am Ala-Dag sehr dominant. Die Falter sind sehr scheu und setzen sich bei Sonnenschein auf die dürren Stengel der Futterpflanze.
Derivatio nominis. Die Benennung erfolgt zu Ehren des Entdeckers dieser neuen Art.
Chamaesphecia taurica sp. n. (Abb. 10)
Material. Holotypus ©, Türkei, Südanatolien, Taurus-Gebirge, Camlıyayla (Namrun), 1200 m, 37.11° N, 34.39° O, 26.—27. 7. 1991, K. Spatenka leg., coll. Museum Witt, München; Para- typen: 7 © © mit gleichen Daten, coll. K. Spatenka; 1 © mit gleichen Daten in coll. I. ToSevski (Beograd, Jugoslawien).
Männchen. Spannweite 19 mm. Labialpalpus schneeweiß, das dritte Glied blaßgelb, apikal braunschwarz durchmischt; Stirn dunkelbraun mit perlmuttartigem Glanz, Auge ventral weiß gerandet; Scheitel glänzend schwarz; Antenne dunkelbraun, außen ockergelb, Pedicellus und Scapus ventral ockergelb; Halskragen rostbraun, lateral weiß.
Thorax: braunschwarz; Tegula innen schmal ockergelb gerandet; Metathorax mit vereinzel- ten dünnen ockergelben Haaren und mit zwei Gruppen gelbweißer Schuppen am Hinterrand; Patagia lateral ockergelb, unter den Flügeln ein großer schneeweißer Fleck; Scapularfleck schneeweiß. Vordercoxa schneeweiß, Femur, Tibia und Tarsus braun mit weißer Beimischung; Hintercoxa und Femur schwarz, ventral mit schneeweißen Schuppen und Haaren, Tibia dorsal braunschwarz, am Distalrand weiß, lateral beiderseits weiß, distal mit breitem dunkelbraunem Saum, am Distalrand schneeweiß, ventral von der Basis zum ersten Spornpaar schwarz, dann bis zur Mitte zwischen beiden Spornpaaren weiß und das distale Drittel wieder braunschwarz, beide Spornpaare schneeweiß, Tarsus braun, das erste Tarsomer dorsal mit ockergelben Schup- pen bestäubt, an den Distalenden der übrigen Tarsomere immer einzelne ockergelbe Schuppen; ventral braun, an den Distalenden der Tarsomere leicht ockergelb bestäubt.
Vorderflügel: mit abgerundetem Apex und sehr gut entwickelten Glasfeldern; Ränder, Adern, Diskalfleck und Fransen braunschwarz, Apikalfeld stark reduziert, braunschwarz; Costalkante bis zum Diskalfleck ockergelb, dann bis zum Vorderapex braunschwarz, subapikal aber mit weißem Fleck; ATA bis zur Flügelwurzel reichend; PTA fast zum Diskalfleck; ETA sehr groß, länger als hoch, durch die Ader in 5 Zellen geteilt; Adern im ETA mit einzelnen ockergelben Schuppen; Apikalfeld sehr schmal, in der Mittelpartie nur ein Viertel so breit wie das ETA, einfarbig braunschwarz. Ventral: Costal-, Analrand und Cubitalstamm dicht ocker- gelb beschuppt.
Hinterflügel: unbeschuppt mit braunschwarzen Adern und Fransen, der sehr schmale Außenrand und Diskalfleck ebenfalls braunschwarz; Fransen am Analrand und Adern an der Flügelwurzel weiß; Diskalfleck sehr schmal, strichförmig, den Aderstiel M3—Cul erreichend.
Abdomen: dorsal braunschwarz, die Tergite 2, 4 und 6 mit schmalen weißen Hinterrändern, alle Tergite mediodorsal schwach ockergelb bestäubt, diese Bestäubung von Tergit 1 bis 7 abnehmend und eine undeutliche schmale Mediallinie bildend; Analbusch dreieckig, in drei Büschel geteilt, craniolateral und medial mit einzelnen ockergelben Schuppen, sonst braun- schwarz. Ventral dunkelbraun, Sternit 2 schneeweiß, 4 in der hinteren Hälfte schneeweiß, 5—7 - medial mit einzelnen schmutzigweißen Schuppen, weiße Fleckchen auch an den seitlichen Hinterrändern der Tergite 3, 5 und 6; Analklappen dunkelbraun, caudal ockergelb.
Weibchen. Unbekannt.
Variabilität. Größe 16,5 —21 mm; Scheitel bei ganz frischen Exemplaren mit einzelnen rost- braunen Schuppen, auf dem Prothorax ist eine mediale ockergelbe Linie angedeutet, und die weiße Umrandung der Abdominaltergite 2, 4 und 6 ist leicht ockergelb überstäubt.
56 K. Spatenka
Genitalapparat o (Abb. 17). Ähnlich Ch. bibioniformis.
Differentialdiagnose. Ähnlich und verwandt mit Ch. bibioniformis, von dieser aber in mehre- ren Merkmalen veschieden. Die polymorphe Ch. bibioniformis bildet in ihrem umfangreichen Verbreitungsgebiet mehrere Ökoformen von unsicherer taxonomischer Stellung. Stücke aus Spanien und Südfrankreich (Futterpflanzen: Euphorbia nicaensis, E. serrata; Euphorbiaceae) sind auffallend groß und robust, von gelbbrauner Grundfarbe und mit sehr großem ETA; in Mitteleuropa, auf dem Balkan, in der Türkei, in Südrußland und in Transkaukasien finden wir Populationen mit breiterem Apikalfeld und grünlicher Grundfarbe vor (Futterpflanze: E. segueriana); in Mazedonien lebt die Art auch in E. myrsinites und E. niciciana, und die Imagines sind auffallend stark gelb bestäubt. In Kappadokien (Türkei) zeichnet sich die Art durch eine sehr reiche weiße Bestäubung aus (Futterpflanze: Euphorbia sp.). Alle diese Formen haben freilich ein breites Apikalfeld mit hellen Strahlen zwischen den Adern und weißer Umrandung des 7. Abdominaltergites. Bei Ch. faurica sp. n. ist das Apikalfeld hin- gegen extrem schmal und einfarbig braunschwarz, und Tergit 7 ist einfarbig braunschwarz.
Bionomie. Die Larvalbionomie ist bisher unbekannt, auf der Typenlokalität hat der Autor aber nur Euphorbia kotschyana (Euphorbiaceae) gefunden, die damit die potentielle Futter- pflanze darstellt.
Habitat. Die Typenlokalität ist eine sehr pflanzenreiche Waldsteppe in Camlıyayla. Das Gebiet um Camlıyayla stellt eine feuchte Enklave im sonst sehr trockenen südöstlichen Taurus dar. Gemeinsam mit Ch. taurica sp. n. wurden an der Typenlokalität folgende Glasflügler gesam- melt: Tintia myrmosaeformis (Herrich-Schäffer, 1846), Paranthrene insolita insolita Le Cerf, 1914, Synanthedon myopaeformis (Borkhausen, 1789), Bembecia illustris (Rebel, 1901), Pyropteron minianiforme (Freyer, 1843), Chamaesphecia haberhaueri (Staudinger, 1879), Ch. proximata (Staudinger, 1891), Ch. alysoniformis (Herrich-Schäffer, 1846) und von ande- ren Autoren auch Osminia fenusaeformis (Herrich-Schäffer, 1852) und Euhagena palariformis (Lederer, 1858).
Derivatio nominis. Die Art wird nach ihrem Fundgebiet, dem Taurus-Gebirge, benannt.
Danksagung
Für die Überlassung des Materials zur Bearbeitung und Beschreibung sowie für wichtige Informationen bin ich den Herren M. Petersen (Pfungstadt), H. G. Riefenstahl (Hamburg), A. Kallies (Greifswald), P. Kautt (Tübingen), A. Lingenhöle (Biberach), T. Dobrovsky (Praha), Z. LaStüvka (Brno) und O. Gorbunov (Moskau) sehr zu Dank verpflichtet. Dr. O. Gorbunov (Moskau) und Dr. I. Tosevski (Novi Beograd) fertigten freundlicherweise die Zeichnungen der Genitalpräparate an. Dafür danke ich ihnen ganz besonders herzlich. Für die sprachliche Korrektur des Manuskriptes bin ich den Herren A. Kallies (Greifswald) und Prof. Dr. C. M. Naumann (Bonn) zu Dank verpflichtet.
Zusammenfassung
Der Autor legt Beschreibungen von neun neuen Glasflüglerarten und -unterarten vor. Bembe- cia peterseni sp. n. wurde in größerer Anzahl an mehreren Lokalitäten in Anatolien (Türkei) gefangen; sie ähnelt mehreren Arten der Gattung Bembecia und ist nahe mit B. iberica aus Frankreich, Spanien und Marokko verwandt. Synansphecia hera sp. n. wird in meh- reren Exemplaren aus dem Taurus (Türkei) beschrieben und ist mit S. mannii verwandt. Dipchasphecia intermedia sp. n. wurde im Pontus und im Taurus (Türkei) gefangen und gezüchtet; sie ähnelt D. lanipes und D. krocha; die Raupe lebt in Acantholimon sp. Chamae- sphecia kautti sp. n. aus Nigde (Türkei) ist nahe mit Ch. bibioniformis verwandt. In die gleiche Gruppe gehört auch Chamaesphecia taurica sp. n. Synanthodon stomoxiformis riefenstahli ssp. n. aus Südspanien, Synanthedon andrenaeformis tenuicingulata ssp. n. aus der Nordost- Türkei und aus Armenien, Bembecia pavicevici dobrovskyi ssp. n. vom Taygetos (Griechen- land) und Bembecia syzcjovi kappadocica ssp. n. aus Kappadokien (Türkei) stellen neue geo- graphische Unterarten bereits bekannter Arten dar.
Neue Glasflügler aus Europa und der Türkei 7,
Literatur
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ToSevski, I. (1989): A new species of the genus Bembecia Hübner, 1819 from Macedonia. — Fragm. Balcanica 14: 81 —89.
RNDr Karel Spatenka, Vyletni 362, CR-14200 Praha 4-Písnice, Tschechische Republik.
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Bd. 4 S. 50-68 | Bonn, September 1997
Review of the genus Paradoxecia Hampson, 1919 (Lepidoptera, Sesiidae, Tinthiinae)
Oleg G. Gorbunov & Yutaka Arita
Abstract. The clearwing moths of the genus Paradoxecia Hampson, 1919 are reviewed. Two new species, P vietnamica sp. n., and P fukiensis sp. n. are described from Vietnam and southeastern China, respectively. Redescriptions of P gravis (Walker, [1865]) and P pieli Lieu, 1935 are also provided. A key to all taxa currently known for the genus is compiled.
Key words. Sesiidae, Tinthiinae, Paradoxecia, new species, taxonomy, Vietnam, China.
The genus Paradoxecia, erected by Hampson (1919) for Aegeria gravis Walker, [1865], originated from “North China” [=eastern China, Shanghai ?]. In 1935, K.O. Vic- toria Lieu described P pieli after a series of specimens reared from larvae, boring in mulberry-tree twigs in eastern China. Until now, Paradoxecia contained only these two species. In 1933, Gaede placed Paranthrene croconeura Meyrick, 1926, a species from Sikkim, India, in Paradoxecia, as did Heppner & Duckworth (1981). However, we believe croconeura neither belongs to the genus Paradoxecia, nor even to the sub- family Tinthiinae. This species seems to belong to the genus Adixoa Hampson, [1893] or a closely related genus of the Paranthreninae. So, we remove croconeura from the genus Paradoxecia.
While investigating the Oriental Sesiidae from the collections of Zoologisches Forschungsinstitut und Museum Alexander Koenig, Bonn, Germany and Muséum d’Histoire Naturelle, Genéve, Switzerland, we came across a few highly interesting specimens from Vietnam and southeastern China belonging to the genus Para- doxecia and distinct from the two known species of this genus. We describe the two unique species below. So, at present, the genus Paradoxecia includes four species, viz. P gravis (Walker, [1865]), P pieli Lieu, 1935, P vietnamica sp. n., and P fukiensis sp. n. In addition, we redescribe P gravis and P pieli and present a key to all known species of Paradoxecia.
Material examined or cited herein has been deposited in the following collections abbreviated in the text as follows: BMNH The Natural History Museum, London, Great Britain; ZFMK Zoologisches Forschungsinstitut und Museum Alexander Koenig, Bonn, Germany; MHNG Museum d’Histoire Naturelle, Geneve, Switzer- ‘land; MUT Zoological Laboratory, Faculty of Agriculture, Meijo University, Nagoya, Japan; CG collection of O. Gorbunov, Moscow, Russia.
60 ONG, Gorbumnow & Yo Am ta
Subfamily Tinthiinae, Tribe Tinthiini Le Cerf Tinthiinae Le Cerf, 1917: 148. Type genus Tinthia Walker, [1865].
Genus Paradoxecia Hampson
Paradoxecia Hampson, 1919: 51 (key), 114 (description). Type-species: Aegeria gravis Walker, [1865], by original designation. Dalla Torre & Strand 1925: 180; Gaede 1933: 797 (part.); Naumann 1971: 22, 55; Heppner & Duckworth 1981: 21 (part.); Fletcher & Nye 1982: 118.
Medium or large-sized clearwing moths with alar expanse 19—40 mm. Head with antenna filiform, shortly bipectinate and ciliate in male, without hair tuft apically; proboscis well- developed, long, functional; frons and vertex smooth, covered with elongate scales; labial palpus smooth-scaled. Legs with tibia and first tarsomere with short tufts of elongate, apically pointed and rusty coloured setae. Forewing entirely opaque, sometimes with a short and narrow semihyaline stripe in place of posterior transparent area; veins R4 and RS separate, Cu2 short, stalked with Cul (Fig. 7). Hindwing transparent or densely covered with semihya- line with brownish or yellowish tinged scales; veins M1 and M2 nearly reduced basally; vein M2 arising slightly before cross-vein, M3 and Cul arising long before cross-vein; Al well- developed (Fig. 7). Male genitalia (Fig. 10) with uncus well-developed, finger-shaped, covered with simple short setae, well separated from tegumen; tegumen triangular, broad, without gnathos; valva broad, rounded distally, covered with simple hairs and setae; saccus short and broad; aedeagus narrow, long, about twice as long as valva, with long coecum penis and with a strong thorn distally where penis broadens dorsally; vesica with numerous minute spinules. Female genitalia (Figs 8—9) with 8th tergite well-sclerotized, with numerous long setae at distal margin; papillae anales strongly sclerotized with outside curved ventral margin, or nearly membranous, with short setae; apophysis posterior somewhat shorter, equal or longer than apophysis anterior; latter sometimes with distinct ventral appendix; lamella postvaginalis sometimes sclerotized; ostium bursae membranous, on intersegmental membrane; antrum short, broad, slightly or well-sclerotized; ductus bursae short and broad, membranous; corpus _ bursae ovoid, membranous, without or with one or two signa.
Diagnosis. Paradoxecia seems to be closely related with Tinthia, Microsphecia Bartel, 1912 (distinct, not congeneric with Tinthia), Paranthrenopsis Le Cerf, 1911, and Zenodoxus Grote & Robinson, 1868. From all of these genera, Paradoxecia differs by the relatively larger size and by the short bipectinate antenna in the male (ciliate in these compared genera). In addi- tion, Paradoxecia can be distinguished from Tinthia and Microsphecia by the shape of the aedeagus in the male genitalia (relatively short and broad with short cecum penis in these compared genera) and by the shape of the female genitalia (8th tergite and both pairs of apophyses relatively longer, antrum long in Tinthia and Microsphecia). Paradoxecia is distinguishable from Zenodoxus by the well-developed uncus and form of the distal part of the aedeagus (uncus small, aedeagus without thorn distally in Zenodoxus). This genus can be separated from Paranthrenopsis by the entirely opaque forewing (with small transparent areas in Paranthrenopsis) and by the shape of tegumen in the male genitalia (small, poorly developed in Paranthrenopsis). Additionally, Paradoxecia can easily be distinguished from the genus Trichocerota Hampson, [1893] by the larger size, entirely opaque forewing and differen- ces in both male and female genitalia.
Structure. The genus Paradoxecia currently consists of four species, viz. P gravis (Walker, [1865]), P pieli Lieu, 1935, P vietnamica sp. n., and P fukiensis sp. n.
Distribution. Known from the northeastern continental part of the Oriental Region: Vietnam, eastern and southeastern China. Including P gravis in the Palaearctic sesiid fauna (Naumann 1971; Spatenka et al. 1993) is probably incorrect, because P gravis is known only from “North China”, which, in our opinion, is most likely Shanghai, a location somewhat south of the Palaearctic Region (Heppner 1991).
Review of genus Paradoxecia 61
Key to species of Paradoxecia based on external characters
BENbdomentdorsallyzonly with yellow coloured’ stripes 2.2... nennen. 2 — Abdomen dorsally without yellow coloured stripes or with yellow
ACG ORALE SUE ae erties tc ont o ed oe we ed oh 3 2. Alar expanse more than 35.0 mm; labial palpus white ventrally and
light brown dorsally; abdomen ventrally entirely dark brown ................. gravis
— Alar expanse less than 35.0 mm; labial palpus pale ochreous with
a few brown scales both basally and apically; abdomen ventrally
WHEN DARRO EMO A GISEIIN a eno cou edo ea a pieli 3. Abdominal tergite 4 with a narrow yellow stripe proximally; tergites
5 and 6 each with a narrow dirty orange stripe distally; ventrally
Siemens with a broad yellow stripe proximally ....5............... fukiensis sp. n. — Abdominal tergite 4 with two small orange spots lateroanteriorly; ventrally abdomen entirely dark brown with violet sheen .......... vietnamica sp. n.
Paradoxecia gravis (Walker) (Figs 1—2)
Aegeria gravis Walker, [1865]: 31. Type locality: “North China” [= eastern China, Shanghai ?]. Holo- type female (BMNH).
Hampson 1919: 114 (Paradoxecia); dalla Torre & Strand 1925: 180 (Paradoxecia); Gaede 1933: 797 (Paradoxecia); Heppner & Duckworth 1981: 22 (Paradoxecia); Spatenka et al. 1993: 85 (Paradoxecia).
Redescription. Female (holotype) (Fig. 1). Alar expanse 39.5 mm; body length 17.3 mm; forewing 17.7 mm; antennae broken off.
Head: antennae broken off; frons rubbed out; labial palpus white ventrally and light brown dorsally; vertex dark brown; pericephalic hairs white.
Thorax: patagia dark brown; tegula dark brown to black with a narrow yellow inner margin; meso- and metathorax nearly without scales, dark brown; thorax laterally grey-brown.
Legs: fore coxa entirely dark brown; hind tibia dark brown with two tufts of rusty, longitu- dinal and apically pointed scales; inserting both medio-dorsally and apically; spurs dark brown.
Abdomen: dark brown; tergite 1 laterally yellow; tergites 2—5 each with a yellow, narrow, distal margin; ventrally entirely dark brown.
Forewing: entirely opaque, dark brown with violet sheen; cilia denuded.
Hindwing: transparent with brownish tingle; veins and outer margin dark brown; discal spot undeveloped; outer margin narrow, ca. twice as narrow as cilia; cilia dark brown.
Female genitalia. Not studied. Male. Unknown. Variability. Unknown.
Diagnosis. This species is closest to P pieli Lieu and differs from it by the larger size (alar expanse up to 30.0 mm in pieli) and ventral coloration of the abdomen (sternites 1+2, 3, 4 and 5 each with a very narrow, yellow to pale yellow, distal margin in pieli). It can easily be distinguished from P vietnamica sp. n. and P fukiensis sp. n. by the coloration of the abdo- men (tergite 4 with two small orange spots latero-anteriorly in vietnamica sp. n. and tergite 4 with a narrow yellow stripe proximally, tergites 5 and 6 each with a narrow dirty orange stripe distally in fukiensis sp. n.). These three species are also distinguishable from each other .by the numerous details of the coloration of the body (see descriptions for P vietnamica sp. n. and P fukiensis sp. n.).
Bionomics and habitat. Unknown.
Distribution. Known only from the type locality: “North China” [eastern China, Shang- hai ?].
Material examined. 1 female (holotype), with labels as in Fig. 2 (BMNH).
62 O. G. Gorbunov & Y. Arita
Paradoxecia pieli Lieu (Fig. 3)
Paradoxecia pieli Lieu, 1935: 193, figs 1—39. Type locality: China, Hangchow [= eastern China, Zhejiang, Hangzhou]. Holotype male (probably lost, was kept in the author’s collection, Musée Heude, Shanghai). Naumann 1971: 55, figs 18, 57, 172 (as P gravis, misidentification); Heppner & Duckworth 1981: 22.
Description. Female (Fig. 3). Alar expanse 30.0 mm; body length 15.0 mm; forewing 13.5 mm; antenna 5.2 mm.
Head: antenna dark brown with purplish violet sheen; frons brown; labial palpus pale ochreous with a few brown scales both basally and apically; vertex brown; pericephalic hairs dark yellow dorsally and white laterally.
Thorax: patagia brown with a large dark yellow spot lateroposteriorly; tegula brown with a few yellow scales apically; meso- and metathorax brown; thorax laterally brown with a small dark yellow spot at base of forewing.
Legs: fore coxa entirely brown to dark brown with violet sheen; hind tibia greyish-brown with violet sheen, internally slightly paler, with two tufts of rusty, longitudinal and apically pointed scales, inserting both medio-dorsally and apically; spurs greyish-brown.
Abdomen: brown with violet sheen; tergite 1 yellow laterally; tergites 2, 4 and 5 each with a narrow yellow margin distally; sternites 1+2, 3, 4 and 5 each with a very narrow, yellow to pale yellow, distal margin; anal tuft small, brown.
Forewing: entirely opaque, brown with violet sheen, basally somewhat darker; cilia brown with violet sheen.
Hindwing: densely covered with semitransparent scales with brownish hue, except on distal half where sparsely covered with brown scales; veins and outer margin brown; discal spot undeveloped; outer margin narrow, ca. twice as narrow as cilia; cilia brown with violet sheen.
Female genitalia (Naumann 1971: fig. 172). 8th tergite relatively short but broad, well- sclerotized, with numerous long setae at distal margin; papilla anales relatively small, slightly sclerotized, with numerous short setae; apophysis posterior somewhat longer than apophysis - anterior; latter with distinct, long, ventral appendix; ostium bursae membranous; antrum short, broad, well-sclerotized; ductus bursae short and broad, membranous; corpus bursae ovoid, membranous, with an elongate signum.
Male. Somewhat smaller: alar expanse 19.6—22.5 mm; body length 10.6—13.0 mm (Lieu 1935).
Variability. Varies in individual size: alar expanse 19.6—30.0 mm; body.length 10.6—15.0 mm. Sometimes abdominal tergite 3 with a narrow yellow margin distally.
Diagnosis. This species seems closest to P gravis (Walker, [1865]) and differs from it by the individual size (alar expanse 39.5 mm in gravis) and coloration of the abdomen ventrally (entirely dark brown in P gravis). It is possible that P pieli is only a form of gravis. Unfortu- nately, only a single female (holotype) of gravis is known and its genitalia were not studied. From P vietnamica sp. n. and P fukiensis sp. n., P pieli can easily be distinguished by the key given above. See also “Diagnosis” for comparisons of these species.
Bionomics (after Lieu 1935). The host plant is Morus sp. (mulberry) (Moraceae). The larva lives inside the thin twig, occasionally in a thick branch. Its development requires one year; the imago appears in July.
Habitat. Mulberry orchards. Distribution. Known only from eastern China, prov. Zhejiang. Material examined. 1 female, China, Hangchow [Hangzhou], 1. VII. 1934 (MUT).
Paradoxecia vietnamica sp. n. (Figs 4, 8)
Description. Female (holotype) (Fig. 4). Alar expanse 31.6 mm; body length 12.3 mm; forewing 15.5 mm; antenna 5.3 mm.
Review of genus Paradoxecia 63
Figs 1—6: Paradoxecia spp. 1. P gravis Walker, [1865], holotype, female (BMNH). Alar expanse 39.5 mm. 2. Ditto, labels. 3. P pieli Lieu, 1935, female, China, Hangchow [Hang- zhou], 1. VII. 1934 (MUT). Alar expanse 30.0 mm. 4. P vietnamica sp. n., holotype, female (MHNG). Alar expanse 31.6 mm. 5. P fukiensis sp. n., holotype, female (ZFMK). Alar expanse 28.0 mm. 6. Ditto, paratype, male (ZFMK). Alar expanse 24.2 mm.
Head: antenna dark brown to black with violet sheen; frons dark brown; labial palpus orange with a few pale yellow scales apically; vertex dark brown; pericephalic hairs yellow- orange dorsally and white laterally.
Thorax: patagia dark brown to black with bronze-violet sheen, with a small orange spot lateroanteriorly; tegula, meso- and metathorax dark brown with violet sheen; thorax laterally dark grey with violet sheen.
Legs: fore coxa dark brown with bronze-violet sheen, with a few orange scales basally; hind tibia dark brown with bronze-violet sheen, with two tufts of rusty, longitudinal and apically pointed scales; both inserting medio-dorsally and apically; spurs dark brown externally and white internally.
Abdomen: dorsally dark brown to black with violet sheen; tergite 4 with two small orange spots lateroanteriorly; ventrally entirely dark brown with violet sheen; anal tuft small, dark brown to black with violet sheen.
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Forewing: black basally; costal margin dark brown with a narrow, longitudinal, light brown line; rest of surface covered with dark brown with violet sheen, with a few light brownish scales; transparent areas undeveloped, but covered with slightly lighter scales; cilia dark brown with bronzed sheen.
Hindwing: transparent with yellowish hue; veins and outer margin dark brown; discal spot undeveloped; outer margin about twice as narrow as cilia; cilia dark brown with bronzed sheen.
Female genitalia. (holotype, genital preparation No. GA—045) (Fig. 8). 8th tergite narrow, well-sclerotized, with numerous long setae at distal margin; papilla anales strongly sclerotized with curved outside ventral margin, with a few short setae; apophysis posterior somewhat shorter than apophysis anterior; latter without ventral appendix; ostium bursae membranous; antrum short, broad, slightly sclerotized; ductus bursae short and broad, membranous; corpus bursae ovoid, membranous, without signum.
Male. Unknown. Variability. Unknown.
Diagnosis. This new species can be distinguished from P pieli by the orange labial palpus (pale ochreous with a few brown scales in the species compared), coloration of the patagia (with a large dark yellow spot lateroposteriorly in pieli) and abdomen (tergites 2, 4 and 5, sometimes 3, each, with a narrow yellow strip distally in the species compared) and by the transparent hindwing (semitransparent with brownish hue, with distal half sparsely covered with brown scales in pieli). From P gravis, vietnamica sp. n. differs by the smaller size (alar expanse 39.5 mm in gravis) and by the coloration of the abdomen and hindwing. The new species is easily distinguishable from P fukiensis sp. n. by the coloration of the abdomen (tergite 4 with a narrow yellow strip proximally; tergites 5 and 6 each with a narrow dirty orange strip distally; laterally segment 1 yellow; ventrally sternite 4 with a broad yellow strip proximally in the species compared). Also, PR vietnamica sp. n. is clearly separated from P pieli and P fukiensis sp. n. by the female genitalia (compare fig. 9, and Naumann 1971: | fig. 172).
Bionomics. The host plant is unknown. The moth has been netted near the end of May.
2 u. ==
Fig. 7: Wing venation of P fukiensis sp. n. Scale bar: 1.0 mm.
Review of genus Paradoxecia 65
Figs 8—9: Female genitalia of Paradoxecia spp. 8. PR vietnamica sp. n., holotype (genital preparation No. GA—045). Scale bar: 0.5 mm. 9. P fukiensis sp. n., paratype (genital prepara- tion No. GA—075). Scale bar: 0.5 mm.
Habitat. Unknown. Distribution. Known only from Vietnam.
Material examined. 1 female (holotype), Vietnam, Pahia, 24. V. 1950, J. Romieux leg. (MHNG).
Paradoxecia fukiensis sp. n. (Figs 5—6, 9—10)
Description. Female (holotype) (Fig. 9). Alar expanse 28.0 mm; body length 14.0 mm; forewing 13.0 mm; left antenna broken off, right one with broken tip.
66 O. G. Gorbunov «€ Y. Arita
Head: antenna dark brown to black with greenish sheen; frons dark brown with gold-green sheen, with a few dirty orange-yellow scales laterally; vertex dark brown with golden-green sheen; labial palpus pale yellow basally and dirty yellow distally; pericephalic hairs dirty yellow dorsally and pale yellow laterally.
Thorax: patagia dark brown with purple-green sheen, with a few dirty yellow scales latero- posteriorly; tegula dark brown with green-violet sheen, with a narrow dirty orange inner margin; meso-, metathorax and thorax laterally dark brown with green-violet sheen.
Legs: fore coxa dark brown with golden sheen, mixed with individual dirty orange scales; hind tibia dark brown with purple-violet sheen, with a few yellow-orange scales ventrally, with two tufts of rusty, longitudinal and apically pointed scales; both inserting medio-dorsally and apically; spurs dark brown.
Abdomen: segments 1-3 black with purple sheen, all other segments dark brown; dorsally tergite 4 with a narrow yellow stripe proximally; tergites 5 and 6.each with a narrow dirty orange stripe distally; laterally segment 1 yellow; ventrally sternite 4 with a broad yellow stripe proximally; anal tuft small, dark brown tipped with light brown.
Forewing: dark brown with bronzed sheen, mixed with individual light brown scales; costal margin narrowly dirty orange; anterior transparent area undeveloped; posterior transparent area very narrow and short, covered with semihyaline brownish scales with blue hue; external transparent area undeveloped, but scales between veins M3 and Cul somewhat lighter and with bluish hue; cilia dark brown.
Hindwing: transparent but densely covered with translucent scales with slightly brownish hue; veins dark brown mixed with a few dirty orange scales; outer margin dark brown, narrow, about twice as narrow as cilia; discal spot undeveloped; cilia dark brown.
Female genitalia. (paratype, genital preparation No. GA—075) (Fig. 9). 8th tergite relatively short and narrow, well-sclerotized, with numerous long setae at distal margin; papillae anales relatively small, slightly sclerotized, with numerous short setae; apophysis posterior somewhat shorter than apophysis anterior; latter with a short ventral appendix; ostium bursae membranous; antrum short, narrow, well-sclerotized; ductus bursae relatively
long and broad, membranous; corpus bursae ovoid, membranous, with two oval signa.
Male. Generally less robust than female. Colour pattern as in female (Fig. 6).
Male genitalia. (paratype, genital preparation Nos GA—102 and 1570 YA) (Fig. 10). Uncus well-developed, finger-shaped, covered with simple short setae, well separated from tegumen; tegumen triangular, broad, without gnathos (Fig. 10a); valva broad, rounded distally, covered with simple short hairs and long setae (Fig. 10b); saccus short and broad, rounded basally (Fig. 10c); aedeagus narrow, long, about twice longer than valva, with long coecum penis and with a strong thorn distally where penis broadens dorsally; vesica with numerous minute spinules (Fig. 10d).
Variability. Vary only in individual size, not in coloration. Size varies as follows. Males: alar expanse 23.0—25.0 mm; body length 11.0—12.0 mm; forewing 10.5—11.5 mm; antenna 4.5—5.0 mm; females: alar expanse 22.5—32.0 mm; body length 10.5—15.0 mm; forewing 9:5—145>smmaantenna4 0—52 mm.
Diagnosis. By the coloration of the abdomen (bicoloured background coloration and bicoloured stripes) this species can not be confused with any other congeners. Additionally, by the shape of papilla anales and signum of the corpus bursae of the female genitalia, fukien- sis sp. n. is clearly distinguishable from pieli and vietnamica sp. n.
Bionomics. The host plant is unknown. Imagines were collected during June at an altitude of about 2300 m.
Habitat. Unknown. Distribution. Southeastern China, prov. Fujian. Known only from the type locality.
Material examined. Holotype female, China, Fukien, Kuatun, 2300 m, 2740 N, 117—40 E, 13. VI. 1938, J. Klapperich leg. (ZFMK). Paratypes: 1 male, same locality as holo- type, 8. VI. 1938, J. Klapperich leg. (ZFMK); 2 males, same locality as holotype, 26. VI. 1936,
Review of genus Paradoxecia 67
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Fig. 10: Male genitalia of P fukiensis sp. n., paratype (genital preparation Nos GA—102 and ' 1570 YA). a. Tegumen-uncus complex. b. Valva. c. Saccus. d. Aedeagus. Scale bar: 0.5 mm.
H. Hone leg. (ZFMK); 1 female, same locality as holotype, 8. VI. 1938, J. Klapperich leg. (CG); 1 female, same locality as holotype, 15. VI. 1938, J. Klapperich leg. (ZFMK); 1 male, 3 females, same locality as holotype, 16. VI. 1938, J. Klapperich leg. (male with genital prepa- ration No. 1570 YA, GA—102) (MUT, ZFMK); 1 female, same locality as holotype, 25. VI. 1936, H. Hone leg. (genital preparation No. GA—075) (ZFMK); 1 female, same locality as holotype, 27. VI. 1936, H. Hóne leg. (ZFMK); 1 female, same locality as holotype, 29. VI. 1938, H. Hone leg. (MUT).
Acknowledgements
We would like to express our cordial thanks to the following colleagues: Prof. Dr. C. M. Nau- mann and Dr. D. Stining (both Zoologisches Forschungsinstitut und Museum Alexander Koenig, Bonn, Germany), Drs G. S. Robinson, K. Sattler, and M. Shaffer (all The Natural History Museum, London, Great Britain), Dr. D. B. Burckhardt (Muséum d’Histoire Natu- relle, Geneve, Switzerland), Dr. K. Spatenka (Prague, Bohemia) and Dr. S. I. Golovatch (Insti- tute for the Problems of Ecology and Evolution, Russian Academy of Sciences, Moscow, Russia) for help during the course of our studies on Oriental Sesiidae. We also have to thank Dr. T. D. Eichlin (California Department of Food and Agriculture, Plant Pest Diagnostics Branch, Sacramento, California, USA) for linguistic help.
Zusammenfassung
Die Glasfliigler der Gattung Paradoxecia Hampson, 1919 werden revidiert. Neben zwei neuen Arten aus Vietnam und SO-China werden die wenig bekannten Arten P gravis (Walker, [1865]) und P pieli Lieu, 1935 neu definiert. Ein Schlüssel erlaubt die Bestimmung aller heute bekann- ten Arten der Gattung.
68 OE Gorbunova Y Arta
References
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Oleg G. Gorbunov, Institute for Problems of Ecology and Evolution, Russian Academy of Sciences, Leninsky prospekt 33, Moscow V-71, 117071 Russia (Visiting Scholar of Zoological Laboratory, Faculty of Agriculture, Meijo University, Tem- paku-ku, Nagoya, 468 Japan). — Yutaka Arita, Zoological Laboratory, Faculty of Agriculture, Meijo University, Tempaku-ku, Nagoya 468 Japan.
Bd. 4 S. 69-76 | Bonn, September 1997
Erster Nachweis einer Strepsipterenparasitierung bei Wanzen in Mitteleuropa (Insecta, Strepsiptera et Heteroptera)
Albert Melber & Hans Pohl
Abstract. Inthe nature reserve Liineburger Heide (Lower Saxony, FR Germany) a new Strepsipteran was discovered in 1993 (Malayaxenos trapezonoti Pohl & Melber, Strepsi- ptera, Corioxenidae), which is parasitizing the two ground bug species Trapezonotus arena- rius (L.) and 7. desertus Seidenst. (Heteroptera, Lygaeidae). This is the first record of para- sitation of Heteroptera by Strepsiptera in Central Europe. First results concerning the univoltine developmental cycle, the biology, and the local distribution of the parasite are presented.
Key words. Insecta, Strepsiptera, Corioxenidae, Heteroptera, Lygaeidae, Northwest Germany, parasitation, life history.
Einleitung
Bei ökofaunistischen Untersuchungen im Bereich des Naturschutzgebietes Lünebur- ger Heide mit dem Ziel, Auswirkungen landschaftspflegerischer Eingriffe auf die Wirbellosenfauna abzuschätzen, wurden neben anderen Tiergruppen auch Wanzen (Heteroptera) bearbeitet. Bei der Präparation von Bodenfallenmaterial fanden sich in den Abdomina einiger Bodenwanzen (Lygaeidae) neben Dipterenlarven (unbe- kannte Tachinidae) verschiedene Entwicklungsstadien von Strepsipteren.
Da für Mitteleuropa überhaupt keine Vertreter der Ordnung Strepsiptera mit Hete- ropteren als Wirte gemeldet sind (Kinzelbach 1978), mußte es sich hier um ein neues Taxon oder um einen Erstnachweis für diesen geographischen Raum handeln. Die Untersuchungen des Strepsipterenmaterials ergab, daß hier eine bisher unbekannte Art vorliegt, die von Pohl & Melber (1996) als Malayaxenos trapezonoti beschrieben wurde.
Weil die Auswertung des gesamten Bodenfallenmaterials eine Reihe von Aussagen über die Biologie dieses Strepsipters erlaubt, sind im folgenden alle gewonnenen Daten über den neuen Vertreter dieser biologisch noch sehr unzureichend erforschten Gruppe zusammengestellt.
Untersuchungsgebiete
Die beiden Untersuchungsgebiete „Bockheber“ und „Oberhaverbeck“ liegen im Naturschutz- gebiet Lüneburger Heide (Niedersachsen) 6 km westlich bzw. 10 km nordwestlich von Schne- verdingen und sind nur rund 5 km voneinander entfernt (TK-Code mit Minutenfeldangabe: - 2825.3/13 bzw. 2825.4/01).
Bei beiden untersuchten Flächen handelt es sich um trockene Calluna-Heiden auf Sand- untergrund (Genisto-Callunetum-typicum). Im Gebiet „Bockheber“ dominiert überalterte Calluna, was ein recht feuchtes Mikroklima in Bodennähe zur Folge hat, im Gebiet „Ober- haverbeck“ zeigten sich in den beiden Untersuchungsjahren 1993 und 1994 starke Vergrasungs- tendenzen mit Deschampsia flexuosa (L.) Trin. In beiden Fällen war eine ziemlich dicke Rohhumusauflage vorhanden.
70 A. Melber &H. Pohl
Material und Methoden
Sämtliche untersuchten Wirtstiere stammen aus Bodenfallenfángen. Die Fallen in der Bau- weise nach Melber (1987) waren jeweils ganzjährig exponiert und wurden halbmonatlich geleert. Als Tötungsflüssigkeit diente unverdünntes Ethylenglykol. Die gefangenen Tiere wur- den nach dem Auslesen des Falleninhaltes in 70%igem Ethanol konserviert. In den Jahren 1993 und 1994 waren im Gebiet „Bockheber“ 6 und im Gebiet „Oberhaverbeck“ 31 Boden- fallen aufgestellt.
Ergebnisse
In Bodenfallen auf den beiden Untersuchungsflächen „Bockheber“ und „Oberhaver- beck“ im Naturschutzgebiet Lüneburger Heide wurden in den Jahren 1993 und 1994 zahlreiche Imagines von Trapezonotus arenarius (Linnaeus) und 7. desertus Seiden- stücker (Heteroptera, Lygaeidae) gefangen, die mit verschiedenen Entwicklungs- stadien des Parasiten Malayaxenos trapezonoti Pohl & Melber (Strepsiptera, Corioxe- nidae) befallen waren.
Aufgrund der relativ großen Anzahl gefundener Parasitierungsfälle können neben der Aussage, daß hier erstmals in Mitteleuropa eine Parasitierung von Wanzen durch Strepsipteren nachgewiesen wurde, auch zahlreiche Angaben zur Biologie des Para- siten gemacht werden.
Morphologische Charakteristika der Parasitierung
Sämtliche Entwicklungsstadien von Malayaxenos trapezonoti wurden im Abdomen der Wirtsimagines gefunden. Abgesehen von 2 Männchen, die im verpuppten Zustand vollständig im Inneren des Wirtsabdomens eingebettet waren, wurde nur 1 Männchen gefunden, dessen Cephalothorax in der Weise, wie es bei dieser Strepsi- pterengruppe üblich ist, intersegmental am Wirtsabdomen ausgebohrt war. Die Aus- trittstelle war in diesem Fall dieselbe wie bei den zahlreich gefundenen weiblichen Cephalothoraces: immer dorsal zwischen dem 2. und dem 3. sichtbaren Abdominal- tergit (morphologisch 3. und 4. Tergit), wo sich eine besonders breite sekundäre Intersegmentalmembran befindet, rechts und links der Abdomenmitte gleich häufig (Abb. 1).
Die Cephalothoraces der Weibchen befanden sich, wie die aller bekannten Corio- xeniden, vollkommen unter den Hemielytren des Wirtstieres und sind daher ohne Präparation nicht sichtbar. Eine Begattung durch das Männchen ist wahrscheinlich trotzdem möglich, wobei das Abdomenende des Männchens seitlich um die Flügel- vorderkante des Wirtes herumgeführt wird. Dies hat Kirkpatrick (1937) für Corioxe- nos antestiae Blair gezeigt, eine Art, die Pentatomiden der Gattungen Antestia und Antestiopsis parasitiert, wo ebenfalls die weiblichen Cephalothoraces auf der Abdo- menoberseite vollständig unter den Deckflügeln der Wirtstiere liegen.
Entwicklungszyklus von Wirt und Parasit
Bei den beiden Wirtsarten Trapezonotus arenarius und T. desertus handelt es sich um univoltine Imaginalüberwinterer. In den Untersuchungsgebieten erfolgt die Eiablage nach der Überwinterung ab März, hauptsächlich im April und Mai, Larven treten ab Mitte Mai auf. Erste Imagines der neuen Generation erscheinen in der ersten Juni- hälfte.
Strepsipterenparasitierung bei Wanzen 71
Abb. 1: Rasterelektronenmikroskopische Aufnahme von Malayaxenos trapezonoti, A: Abdo- men von Trapezonotus desertus mit 2 herausgebohrten Malayaxenos, links Weibchen, rechts männliches Puparium; B: männliches Puparium; C: Weibchen. Maßstab: A: 1 mm, B, C: 0,1 mm.
Malayaxenos trapezonoti überwintert in den Wirtsimagines als Sekundärlarve. Dieses Entwicklungsstadium war sowohl vor der Winterruhe des Wirtes im August und September als auch danach im März und April in den laufaktiven Wirtsimagines zu finden. Herausgebohrte Parasitenweibchen und -männchen ließen sich dann ab Mitte März bzw. Mitte April nachweisen. Reife Weibchen mit fertig ausgebildeten Primärlarven wurden Mitte Mai bis Mitte Juli festgestellt. Die Primärlarven treffen also bei ihrer Wirtssuche vor allem auf die frisch entwickelten Imagines der neuen Generation, ob sie auch schon in ältere Wirtslarven eindringen, die zu dieser Zeit noch in großer Anzahl vorhanden sind, konnte nicht überprüft werden.
Eine graphische Zusammenfassung der bisherigen Erkenntnisse über den jahres-
zeitlichen Verlauf der Wirts- und Parasitenentwicklung zeigt die Abb. 2.
Spezifität der Parasitierung
Die beiden Wirtsarten Trapezonotus arenarius und T. desertus stehen sich taxono- misch sehr nahe; 7! desertus wurde erst 1951 von 7. arenarius abgetrennt. Beide Arten sind zwar in ganz Nordwestdeutschland verbreitet, ihre relative Häufigkeit wird aber
72 A. Melber &H. Pohl
deutlich von einem Kontinentalitätsgradienten beeinflußt: In Calluna-Sandheiden tritt im Westen (Emsland) nur 7! desertus auf und erst in Zentralniedersachsen kommt 7: arenarius in ganz geringen Anteilen hinzu, um dann im Osten (z. B. Um- gebung Gifhorn) Anteile um 25 % zu erreichen. Noch weiter im Osten an der Elbe (Wendland) kommt praktisch nur noch 7! arenarius vor.
In den beiden Untersuchungsgebieten lag 1993/94 das Verhältnis von 7. arenarius : T. desertus-Imagines in Bodenfallen bei 1:12,2. Das Verhältnis parasitierter Indivi- duen unter den beiden Lygaeiden-Arten war 1:10,0. Da es sich hierbei aber nur um insgesamt 37 Parasitierungsfälle handelt, läßt sich keine signifikante Präferenz für eine der beiden Wirtsarten erkennen.
Andere Lygaeidenarten in den Untersuchungsgebieten, die als potentielle Wirts- arten ebenfalls untersucht wurden (Macrodema micropterum Curtis, Pterotmetus staphyliniformis Schilling, Rhyparochromus pini Linnaeus, Scolopostethus decoratus Hahn und Stygnocoris sabulosus Schilling), waren nie parasitiert, so daß zumindest eine strenge Gattungsspezifität der Parasitierung vorzuliegen scheint.
Geschlecht des Wirtes und Parasitierung
Daß keine Präferenz des Parasiten für ein bestimmtes Geschlecht der Wirtstiere vor- handen ist, konnte ebenfalls gezeigt werden. Das Geschlechterverhältnis beider Trapezonotus-Arten (Männchen zu Weibchen) bei den Bodenfallenfängen insgesamt lag bei 1:1,50, bei den parasitierten Tieren bei 1:1,57.
Mehrfachparasitierung
Bei 5 der insgesamt 37 untersuchten Parasitierungsfälle lag eine Mehrfachparasitie- rung vor. 2 7. desertus-Männchen und 1 Weibchen waren mit je 2 reifen, dorsal links und rechts herausgebohrten Parasitenweibchen besetzt. In einem 7. desertus-Weib-
überwinterte neue Wirtsgeneration Wirtsgeneration
ae Laufaktivitatsperiode des Wirtes
Monate N nA 2. a Ad u a 2. Monatshälften o Ya 2 1 2 — 2] 1
Larven Sekundärlarven
c Primarlarven
3;
32 00 verpuppte, unreife OQ D E QQ mit Eiern
go 90 mit Primárlarven $3 ,leere” OO
m
exe) verpuppte JO
leere Puparien
@ = tatsächlich nachgewiesene Entwicklungsstadien O = aufgrund der er m vermutete Entwicklungsstaen
Abb. 2: Jahreszeitliches Auftreten verschiedener Entwicklungsstadien von Malayaxenos trape- zonoti in Beziehung zum Jahreszyklus der Wirtsarten.
Strepsipterenparasitierung bei Wanzen 73
Anzahl Wirtsimagines je Monatshälfte in Bodenfallen
Parasitierungsgrad %
Monatshälften Monate
Abb. 3: Beziehung zwischen der Anzahl der insgesamt in Bodenfallen (1993 + 1994 gefange- nen Imagines von Trapezonotus desertus und T. arenarius beider Untersuchungsgebiete und dem Anteil der durch Malayaxenos trapezonoti parasitierten Individuen.
chen fand sich neben einem reifen Malayaxenos-Weibchen, welches normal dorsal ausgebohrt war, ein verpupptes Männchen im Inneren des Wirtsabdomens. In einem fünften Fall wurde ein 7. desertus-Weibchen gefunden, welches neben 2 verpuppten Parasitenweibchen noch eine mittelgroße Sekundärlarve enthielt. Offenbar können 2 Malayaxenos-Individuen in einem Wirtstier zur vollen Entwicklung gelangen, für 3 Parasiten gleichzeitig reicht dann aber die Nahrungsressource nicht mehr aus.
Einfluß der Parasitierung auf den Wirt
Offensichtlich wird die Laufaktivität des Wirtes, die sich in der Bodenfallenfangrate widerspiegelt, durch die Parasitierung beeinflußt. Das normale jahreszeitliche Muster der Laufaktivität (Abb. 3, oben) zeigt für beide Trapezonotus-Arten einen Aktivitätsbeginn im März, ein Maximum in der ersten Maihälfte und ein Ausklingen der Laufaktivität aufgrund des Absterbens der überwinterten Generation Ende Juli. - Zu dieser Zeit kommen dann schon wieder Imagines der neuen Generation hinzu (in Abb. 3 nicht dargestellt). Der relative Anteil parasitierter Wirtsindividuen in den Bodenfallen wird aber nun mit ansteigender Bodenfallenfangrate immer geringer (Abb. 3, unten), was nur durch eine reduzierte Laufaktivität solcher Tiere in der 2. Aprilhälfte und im Mai erklärbar ist. Wie der Abb. 1 aufgrund des Auftretens her- ausgebohrter Malayaxenos-Weibchen und dem Vorliegen reifer Männchen zu entneh-
74 A. Melber € H. Pohl
men ist, dürfte dieser Zeitraum die Periode der Kopulation des Strepsipters sein. Zu dieser Zeit sind also die parasitierten Wirtsimagines deutlich weniger laufaktiv als die unparasitierten.
Die Frage, inwieweit die Reproduktionskapazität und Vitalität der Wirtstiere durch die Parasitierung beeinflußt wird, läßt sich nur grob abschätzen. Festzustellen ist, daß in den einfach parasitierten Trapezonotus-Imagines die Gonaden nach Ausreifen der Parasiten immer noch teilweise erhalten und aktiv sind. Es wurden bei den reifen Wirtsweibchen neben den Parasiten in der Regel immer noch reife Eier in Teilen des Ovars gefunden; entsprechend verfügten parasitierte Trapezonotus-Männchen immer noch über Rile reifer Hoden. Ob solchen Tieren aber noch eine erfolgreiche Kopula- tion bzw. Eiablage möglich ist, kann nicht beantwortet werden. Bei den Mehrfach- parasitierungen waren im Wirtsabdomen keine nennenswerten Organreste mehr zu finden, hier erfolgt also eine vollständige parasitäre Kastration.
Wie die recht hohen Fangraten parasitierter Wirtstiere gegen Ende der Laufaktivi- tätsperiode (Juni/Juli) zeigen, wird die Lebensdauer der Trapezonotus-Imagines durch die Parasitierung nicht nennenswert verkürzt, im Gegenteil könnte sogar eine Seneszenzverzögerung für das Wiederansteigen des Anteils parasitierter Tiere in den Bodenfallen zu dieser Zeit verantwortlich sein.
Regionale Verbreitung von Malayaxenos trapezonoti
Um erste Aussagen über die Häufigkeit und Verbreitung von Malayaxenos trapezo- noti zu ermöglichen, wurde älteres Bodenfallenmaterial aus Calluna-Heiden in Niedersachsen, in dem höhere Trapezonotus-Fangzahlen auftraten, auf Stylopisie- rung hin untersucht. Wie die Tab. 1 zeigt, wurden trotz teilweise hoher Trapezonotus- Individuenzahlen keine weiteren Standorte mit Malayaxenos-Parasitierung gefun- den. Sogar in Calluna-Heiden, die in enger Nachbarschaft zu den beiden Unter- suchungsgebieten mit Malayaxenos-Vorkommen liegen, wurde die neue Strepsipte- renart nicht nachgewiesen. Malayaxenos trapezonoti scheint somit also nur in räum- lich sehr engumgrenzten Populationen vorzukommen.
Diskussion
Die bis jetzt vorliegende Auswertung von 2 Bodenfallenjahrgängen von 2 Standorten mit insgesamt 37 Parasitierungsfällen erlaubt natürlich noch keine vollständige Übersicht zur Biologie von Malayaxenos trapezonoti. Grundlegende Tatsachen aller- dings, wie z.B. das Vorliegen einer univoltinen Entwicklung, können bereits als ge- sichert gelten.
Etwas unklar bleibt die Lebensweise der Männchen. Insgesamt wurden neben 30 Strepsipterenweibchen nur 4 Männchen (als Puppen oder leere Puparien) nachgewie- sen. Bei 2 von diesen Männchen-Funden waren die fertig verpuppten und skleroti- sierten Tiere vollständig im Wirtsabdomen eingebettet und der Cephalothorax war nicht herausgebohrt, was bedeutet, daß diese Männchen nicht mehr den Wirt verlas- sen konnten. Vielleicht befindet sich Malayaxenos trapezonoti in einer phylogeneti- schen Entwicklung in Richtung auf eine Parthenogenese, worauf der stark reduzierte Männchen-Anteil in der Population und das Auftreten gewissermaßen „funktions- loser“ Männchen hindeuten könnte. Andererseits zeigen die beiden anderen Männ-
Strepsipterenparasitierung bei Wanzen 75
Tabelle 1: Vorkommen von Trapezonotus desertus und T: arenarius-Imagines, die von Malayaxenos trapezonoti parasitiert waren, in 8 verschiedenen Untersuchungsgebieten in Niedersachsen.
Anzahl untersuchter gefundene Individuen Parasitierungsfálle
Untersuchungsgebiet (mit TK 25- Code)
Untersuchungsjahr
Tútsberg 1993 + 94 (2825.3)
Bockheber 1993 + 94 (2825.3)
Oberhaverbeck 1993 + 94 (2825.4)
Oberhaverbeck II 1986 (2825.4)
Pietzmoor-Heide 1993 (2924.2)
Bokeler Heide 1986 (3229.1)
NSG Heiliger Hain 1986 + 87 (3329.3)
Helstorf-Reiterheide 1989 + 90 (3423.2)
chen-Nachweise, daß höchstwahrscheinlich normale Männchen vorhanden sind. Für Corioxenos antestiae konnte Kirkpatrick (1937) zeigen, daß 1 Männchen mindestens 12 Weibchen begatten kann, daher reicht ein geringer Männchen-Anteil für eine nor- male bisexuelle Vermehrung aus. |
Da allen hier dargestellten Ergebnissen ausschließlich Bodenfallenmaterial zu- erundeliegt, könnte natürlich ein geringerer Männchen-Anteil bei Malayaxenos auch durch eine reduzierte Laufaktivität von Wirten, die von männlichen Parasiten befallen sind, zustande kommen.
Danksagung
Herrn Dipl.-Biol. Ludger Schmidt und Mitarbeitern der Norddeutschen Naturschutzakademie in Schneverdingen, insbesondere Herrn Dr. Johannes Prüter, sei für die Überlassung von Material und die Mithilfe herzlichst gedankt.
Zusammenfassung
An zwei eng benachbarten Calluna-Heidestandorten im Naturschutzgebiet Lüneburger Heide ‘wurde 1993 und 1994 bei Trapezonotus desertus und T: arenarius (Heteroptera, Lygaeidae) erstmals für Heteropteren in Mitteleuropa eine Parasitierung durch Strepsipteren nachgewie- sen. Es handelt sich hierbei um Malayaxenos trapezonoti Pohl & Melber, 1996 (Strepsiptera, Corioxenidae). Die äußerlichen Charakteristika der Parasitierung werden beschrieben und anhand von 37 Parasitierungsfällen der univoltine Entwicklungszyklus des Parasiten rekon- struiert. Eine Präferenz für eine der beiden Wirtsarten liegt offenbar nicht vor, wie auch nicht für eines der Wirtsgeschlechter. Das Auftreten von Doppel- und Dreifachparasitierung wird
76 A. Melber &H. Pohl
beschrieben. Durch die Parasitierung wird die Laufaktivitát der Wirtsimagines, gemessen anhand der Bodenfallen-Fangrate im Zeitraum der Kopulationsflüge von Malayaxenos trape- zonoti, drastisch reduziert. Eine weitere Auswirkung der Parasitierung ist eine partielle para- sitäre Kastration der Wirtsimagines. Die erfolglose Suche nach Malayaxenos trapezonoti an anderen Calluna-Heidestandorten in Niedersachsen mit individuenreicheren Vorkommen von Trapezonotus-Arten zeigt, daß diese Strepsipterenart offenbar nur sehr lokal verbreitet ist.
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Dr. Albert Melber, Lehrgebiet Zoologie-Entomologie, FB Biologie, Universität Han- nover, Herrenhäuser Str. 2, D-30419 Hannover. — Dipl.-Biol. H. Pohl, Institut für Zoologie, Technische Hochschule Darmstadt, Schnittspahnstr. 3, D-64287 Darm- stadt.
Bd. 4 S. 71-86 | Bonn, September 1997
Post-eclosion heterochrony in the maturation of the adult females of a termitophilous fly (Diptera, Phoridae)
R. H. L. Disney
Abstract. Many termitophilous adult insects postpone completion of the expansion of parts, such as the head and femora, until long after eclosion from their pupae. Conse- quently adults of different ages may differ markedly in appearance. Among the Termitoxe- niinae the most extreme post-eclosion changes occur in the females of Clitelloxenia ass- muthi (Wasmann 1902). Documentation of these changes lead to the proposal that five species be synonymised with this species. It has been argued (Assmuth 1913) that the females of this species are likely to ingest haemolymph from the older nymphs of their termite hosts. If so, ingestion of termite-nymph hormones might delay the cessation of expansion and sclerotization of parts of these flies following eclosion. At the least it is concluded that darkening of the cuticle cannot be treated as a reliable indicator of scleroti- zation. Probably darkening and hardening are decoupled in these flies.
Key words. Diptera, Phoridae, Termitoxeniinae, synonyms, heterochrony, teneral state, Isoptera, Termitidae.
Introduction
Heterochrony is the “dissociation, during development, of factors of shape, size, and maturity, so that organisms mature in these respects at earlier or later growth stages” (Nichols 1989). In evolutionary terms it has been defined as “an evolutionary change in the onset or timing of development of a feature relative to the appearance or rate of development of the same feature in the ontogeny of an ancestor” (Lincoln et al. 1982). It has evidently been a widespread mechanism giving rise to novelty during evolution (Matsuda 1987).
Among termitophilous insects heterochrony tends to manifest itself as a tendency for parts of certain adults to remain in the teneral state for a prolonged period after eclosion from the pupa. A general review of termitophilous insects (Kistner 1982) has shown that heterochrony occurs among termitophilous Carabidae, Cecidomyiidae, Phoridae, Scarabaeidae and Staphylinidae. In this paper a striking case of an Orien- tal species of Termitoxeniinae (Diptera, Phoridae) is documented and discussed.
This study has been made possible by my access to the extensive collections of termitophi- lous Phoridae made by Dr David H. Kistner (California State University, Chico) over many years. In addition I am grateful to the following for the loan of type material in their cares: Dr. H. Ulrich, Zoologisches Forschungsinstitut und Museum Alexander Koenig, Bonn; Dr .F. N. Dingemans-Bakels, Natuurhistorisch Museum, Maastricht; and Dr B. R. Pitkin, the Natural History Museum, London. I am grateful to my colleague Dr Simon Maddrell for useful discussions. My studies are currently funded by a grant from the Leverhulme Trust, to my colleague Dr William Foster for a Research Associate to work on termitophilous Phoridae, and the Isaac Newton Trust (Trinity College, Cambridge). I am grateful to W. M. Lee (Zoology Department, Cambridge University) for his skilled operation of the Scanning Electron Microscope.
78 RSHSESDismnes;
Post-eclosion changes in Termitoxeniinae
The taxonomy of the aberrant termitophilous Termitoxeniinae, of the famly Phori- dae, is currently undergoing revision. This follows the realisation that the males, the flying-stage females and flightless-stage females had been erroneously assigned to three separate subfamilies by earlier authors (Disney 1989, 1990, 1992, 1994, Disney & Cumming 1992, Dessart 1993). It had long been recognised that the females undergo post-eclosion changes from a stenogastric to a physogastric stage (e.g. Ass- muth 1913, Mergelsberg 1935). It has only recently been realised that the early steno- gastric females shed their wing membranes on entering their host-termite’s nest (Disney & Cumming 1992). Furthermore the procurement of mating pairs of an Afrotropical species has allowed reconstruction of the complete sequence of changes that occur in the adult females after eclosion. This has prompted a closer look at a taxonomically confused complex of six ‘species’ assigned to the Oriental genus Clitelloxenia Kemner, and a re-evaluation of these species in terms of most being different stages in a series of post-eclosion changes within a single species.
Clitelloxenia assmuthi (Wasmann 1902)
Termitoxenia assmuthi Wasmann 1902: 151. Holotype Q, INDIA: Khandala, near Bombay (Natural History Museum, Maastricht) [presumed cotype material examined]
Termitoxenia peradeniyae Wasmann 1913: 20. Holotype Y, SRI LANKA: Peradeniya (Natural History Museum, Maastricht) [examined]. Syn. nov.
Termitoxenia clitellaria Schmitz 1915: 36. Holotype Q, SRI LANKA: Maha, Illupalama, Anuradha- pura (Museum Alexander Koenig, Bonn) [examined]. Syn. nov.
Termitoxenia longiceps Schmitz 1915: 36. Holotype ©, MALAYSIA: Malacca (Natural History — Museum, Maastricht — only two slide-mounted legs survive) [examined]. Syn. nov.
Termitoxenia hemicyclia Schmitz 1931: 176. Holotype Q, JAVA, Buitenzorg (Museum Alexander Koenig, Bonn and also the Natural History Museum, London — a series of presumed cotypes) [series examined]. Syn. nov.
Clitelloxenia marshalli Schmitz 1938: 35. Holotype Q , INDIA: Bangalore, Mysore (Museum Alexander Koenig, Bonn — one wing stump; rest in Natural History Museum, London) [examined]. Syn. nov.
A mature physogastric female from Java is shown in Figs 1 and 2. It is postulated that the material treated here as a single species exhibits a more marked degree of post-emergence change than most Termitoxeniinae. It is proposed that a failure to appreciate the extent of these changes in the females has misled early workers into describing as new species specimens which merely represented different stages of species already known. In most cases only limited material was available to these early workers. The larger samples now available, mainly because of the collections made by Dr David Kistner, serve to indicate that there are great differences between flies of different ages within a single sample, but litte, if any, difference between flies of the same age from different samples. There is thus now no doubt that C. clitellaria and C. marshalli should be treated as synonyms. The small differences highlighted by Schmitz (1916, 1938) clearly lie within the ranges of variation to be found in a single sample of flies from the same termite nest.
The removal of two species by synonymy still leaves us with four “species”, which are based on geographical region — the Indian subcontinent, Sri Lanka, Java and Malaysia. Aggregated samples (of Kistner’s material plus specimens in museums)
Maturation heterochrony in a termitophilous fly 79
imm 4@kU 538E1 0672700 SE
Figs 1—2: Clitelloxenia assmuthi mature physogastric female. 1, lateral view of head, 2, whole fly from above.
80 RATE Disney,
Fig. 3: Clitelloxenia assmuthi females, posterior faces of hind femora. The youngest fly at top and oldest below. (Scale bar = 0.1 mm).
from each of these four regions look different from each other. However, this seems to be primarily due to the different age structures of the total sample of specimens available for study from each region. Table 1 presents the length frequencies of the hind femora for females from the four regions. The differences between these aggregated samples for the four regions could be explained by any one of the following hypotheses:
(1) An accident of sampling, such that the aggregated samples from each region happen to represent populations of different ages.
(2) The four regions are characterised by four different taxa, species or subspecies, with different growth characteristics.
Maturation heterochrony in a termitophilous fly 81
Fig. 4: Clitelloxenia assmuthi female, left face of head. s = anterior (lower) supra-antennal bristle; r = rear of head. (Scale bar = 0.1 mm).
(3) A single species is subjected to different phenotypic modifications of its growth characteristics in the different regions, possibly due to different species of Odontoter- mes serving as its hosts in the four regions.
The relationship between age of fly and length of hind femur is indicated by Fig. 3. This shows the hind femora of females from a single sample from a nest of Odon- totermes grandiceps Holmgren from Bogor, Java (collected by Dr Kistner, 20 June 1977). The fly at the top had two developing eggs only 0.44 mm long, while that at the bottom had a single egg 0.93 mm long. In the topmost specimen the femur is only lightly tinged brown. In the bottom two specimens the femora are dark brown. Furthermore, as indicated by these two specimens, the larger the femur the more likely it is to exhibit distortion of its basic shape. Fig. 4 depicts the head of a female from Sri Lanka. The basiproboscis is seemingly well sclerotized and even more so the occipital region. Fig. 5 depicts the development of the occipital region in a series of females of the same series as for the femora depicted in Fig. 3. In Fig. 6 the ratio of the head length to length of hind femur is plotted for the 82 females of Table 1. The head length was measured from the anterior supra-antennal bristles to the back of the head (Fig. 4). Such a tight scatter of points, along a single straight line, would be highly improbable if the hypothesis of two or more sibling species were to be favoured, to explain the differences in Table 1.
Examination of slide-mounts of females made from the material collected by Dr Kistner, and the measurement of the lengths of the dominant developing oocytes in particular, has allowed certain inferences to be drawn. Typically two oocytes start to develop in the young stenogastric female. In a few cases both mature, eventually attaining a length exceeding 0.8 mm. Typically, however, one ceases to grow as the other starts to become more elongate (e.g. Fig. 7). The oocyte whose development is halted frequently proceeds to degenerate, but in some cases it seems to persist in a healthy but static state. Whether it will resume normal development when the first
82 ROTA Diisinieny
Fig. 5: Clitelloxenia assmuthi left faces of heads of females of different ages, the youngest at top (from the same series as in Fig. 3). (Scale bar = 0.1 mm).
Table 1: Recorded lengths of the hind femora of samples of females of Clitelloxenia assmuthi from different regions.
length in mm 0.3—0.4 0.4—0.5 0906 0.6—0.7 0.7—0.8 0.8—0.9
India + Pakistan Sri Lanka
Java Malaysia
TOTALS 1 28 28 15
Maturation heterochrony in a termitophilous fly 83
Table 2: Recorded lenths of developing eggs in relation to lengths of hind femora of females of Clitelloxenia assmuthi from different regions.
length of developing oocyte (egg) in mm Region 0.2-0.4 0.4—0.6 0.6—0.8 0.8—1.0
Pakistan Sri Lanka Malaysia Java
TOTALS
Pakistan Sri Lanka Malaysia Java
TOTALS
y = 5.0454e-2 + 0.57937x RA2 = 0.751 0.6 [a]
n=82
Head length (mm)
0.3 0.4 0.5 0.6 0.7 0.8 0.9
length of hind femur (mm)
Fig. 6: Clitelloxenia assmuthi females, head lengths plotted against lengths of hind femora.
egg has been laid is not known. It needs emphasizing that when flies with oocytes and eggs of different sizes are arranged in order, from smallest to largest, then this correlates with the degree of differentiation of the egg. In flies with the shortest hind femora developing oocytes are not discernible in my slide-mounted specimens. In those with intermediate length femora the contents of the developing oocytes or eggs are little, if any, differentiated. In those with the longest femora not only has the
84 Re Eee Disney,
Fig. 7: Clitelloxenia assmuthi the two developing oocytes in a single female. The upper oocyte (of the left side) has ceased growing, the lower egg (of the right side) is nearing maturity. (Scale bar = 0.1 mm).
development of one egg halted, but in the other egg there is increasing differentiation of the contents, with the formation of an increasingly distinct chorion. The most mature eggs exhibit very little variation in length. Smaller flies do not have smaller mature eggs than larger flies, they have more immature eggs (which are therefore smaller) than are to be found in larger flies. In a few large flies no developing eggs could be observed. In these cases the appearance of the abdomen suggested that the lack of an egg was probably due to it having been recently laid. Measurements of developing eggs found are presented in Table 2.
The data in Table 2 provide no support for the hypotheses based on assuming that the females in the four regions have different growth characteristics. The most parsimonious conclusion, therefore, is that hypothesis (1) an accident of sampling, is sufficient to explain the differences between the samples from the four regions. Until defensible differences can be demonstrated, therefore, it is proposed to treat the material from the four regions as belonging to a single species, which continues to lengthen its femora and head right up to the oviposition of its first mature egg at least. Thus C. peradeniyae, C. longiceps and C. hemicyclia are herewith proposed as further synonyms of C. assmuthi.
Maturation heterochrony in a termitophilous fly 85
Discussion
Clitelloxenia assmuthi exhibits the most extreme post-eclosion changes in the Termi- toxeniinae studied to date. It is perhaps relevant to consider an inference proposed by Assmuth (1913). On the basis of the appearance of the gut contents and the struc- ture of the mouthparts, he suggested that this species probably ingests haemolymph from older nymphs of its termite host. If so, such behaviour would ensure ingestion of hormones prevalent in the blood of these juvenile termites. These termite hormo- nes might then serve to delay cessation of the expansion and sclerotization of the head and femora in these flies.
The continuing growth of the occipital region of the head in Clitelloxenia assmuthi after the apparent onset of sclerotization is most surprising. It is certainly evident that the darkening of the femora and occipital region is not correlated with a cessation of growth. At the least this suggests that darkening may be an unreliable indicator of sclerotization. The two familiar indicators of sclerotization, hardening and darkening, may not necessarily be coupled. Indeed it is established that sclerotization sometimes occurs without darkening, as in the case of albino insects (Chapman 1991). It is suggested that in these flies darkening is initiated earlier than hardening. If darkening and hardening are not decoupled in these flies then it would be neces- sary to postulate some reversal of hardening to allow continuing growth. This would seem most improbable.
Zusammenfassung
Bei manchen termitophilen Insekten wird das Wachstum von Körperteilen, wie Kopf und Femora, erst lange nach der Imaginalhäutung abgeschlossen, mit der Folge, daß Imagines ver- schiedenen Alters recht verschieden aussehen können. Was die Termitoxeniinae betrifft, wur- den die stärksten postmetabolen Veränderungen der äußeren Gestalt bei den Weibchen von Clitelloxenia assmuthi (Wasmann 1902) beobachtet. Auf Grund von Korrelation und Häufig- keitsverteilung der Merkmale werden fünf weitere beschriebene Arten als Altersstadien von C. assmuthi gedeutet und mit dieser synonymisiert. Assmuth (1913) vermutete, daß die Weibchen dieser Art Hämolymphe von älteren Larven der Wirtstermite saugen. Sollte dies zutreffen, so wäre es denkbar, wenn auch unwahrscheinlich, daß der Abbruch des postmetabolen Wachs- tums und die Aushärtung der Cuticula durch Wirkung des aufgenommenen Juvenilhormons verzögert werden. Die Melanisierung der Cuticula setzt lange vor dem Stillstand des Wachs- tums ein und erfolgt demnach offenbar unabhängig von der Sklerotisierung.
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Dr R. H. L. Disney, Field Studies Council Research Fellow, University Department - of Zoology, Downing Street, Cambridge, CB2 3EJ, England.
Recognition of a sibling species of the Australian Eutermiphora abdominalis Lea (Diptera: Phoridae)
R. H. L. Disney
Abstract. Eutermiphora watsoni sp. n. is distinguished from the type species of the genus, E. abdominalis Lea 1911. The females of both species live in the colonies of Nasuti- termes fumigatus (Brauer 1865) in New South Wales. The taxonomic significance of the position of the pre-apical setae of the palps is discussed, with particular reference to the problem of the affinities of the Termitoxeniinae.
Key words. Diptera, Phoridae, new species, Isoptera, Termitidae.
Introduction
The aberrant termitophilous genus Eutermiphora Lea (1911) (Diptera: Phoridae) was established for a single female from a termite’s nest at Sydney, New South Wales, Australia. Unfortunately Lea overlooked both the wing stumps and halteres that, in mature females, are concealed beneath a forward extension of the anterior region of the abdomen that covers much of the thorax. The result was to cause confusion in keys to genera and in attempts to determine the affinities of this genus, apart from its assignment to the Metopininae. Lea's description is very brief and has a single sketchy figure of the whole fly. Beyer’s detailed, but turgid, redescription, based on two females from Victoria, is longer but devoid of figures. Furthermore he also over- looked the halteres and wing stumps. Seven females of Eutermiphora from a colony of Nasutitermes fumigatus (Brauer 1865) at Braidwood, New South Wales, allowed recognition that the mature females retain halteres and wing stumps (it being proba- ble that the young females shed their wing membranes upon entering the termite colony, as with Termitoxeniinae). In the light of this discovery, an illustrated re- appraisal of the genus was provided (Disney 1989). On a recent trip to Australia I collected a single female Eutermiphora from a colony of Nasutitermes fumigatus at Berowra, north of Sydney. On slide mounting this specimen, it proved to be a sibling species of the series from Braidwood. I therefore borrowed the type of E. abdomina- lis. The specimen from Berowra is conspecific. It is concluded that the series from Braidwood constitutes a hitherto unrecognised sibling species. It is named below, its description augmented and its distinction from E. abdominalis specified.
The genus Zutermiphora is characterised by Disney (1989) and included in the latest key to the genera of the Phoridae of the world (Disney 1994). It is currently only known from mature, flightless-stage, females.
88 Rea Jal IE. DM my
Figs 1—2: Eutermiphora females, gland openings (g) at rear of dorsal faces of fifth abdominal segments. 1, E. watsoni; 2, E. abdominalis. (Scale bars = 0.1 mm).
Eutermiphora abdominalis Lea, 1911
Eutermiphora abdominalis Lea, 1911: 77. Holotype 9, AUSTRALIA, New South Wales, Sydney (South Australien Museum, Adelaide) [examined]. Beyer, 1966: 214. 2 9, AUSTRALIA, Victoria, Echuca, 1. 1. 1936. (National Museum of Victoria, Melbourne) (the specimens appear to have been lost).
Lea (1911) provided a single figure of the whole fly. His holotype is now remounted on a slide. The principal difference from the newly-recognised species is in the hairing and microtrichia of the abdomen (see below). The microtrichia are exceptionally small and densely crowded (Fig. 5). The measurements in Beyer’s redescription allow recognition that his specimens belong to this species.
Female (Figs 2, 5, 8, 10—11).
A sibling species of Eutermiphora abdominalis 89
Figs 3—6: Eutermiphora females, abdominal hairs and microtrichia on dorsal face. 3, E. wat- soni, fifth segment; 4, E. watsoni, third segment; 5, E. abdominalis, fifth segment; 6, E. wat- soni, base of bristle on segment 3. (Scale bars = 0.1 mm for 3—5 and 0.01 mm for 6).
The host reported for this species by Lea (1911) was “Eutermes fumipennis”, now called Nasu- _ titermes fumipennis (Walker). However, this species is now known not to occur in Australia and Watson & Gay (1980) suggested that most Australian records of this species were probably really Nasutitermes exitiosus (Hill) or, in a few cases, N. walkeri (Hill). However, there is a single soldier termite mounted with Lea's holotype of this fly. I have now identified this termite as N. fumigatus.
New material examined: Q, New South Wales, Berowra, 7. VI. 1995 (R. H. L. Disney), in galleries of Nasutitermes fumigatus in log.
90 REE Disney:
Eutermiphora watsoni sp. n. Eutermiphora abdominalis Disney 1989: 435. Misidentification
Female only known (Figs 1, 3—4, 6—7, 9, 12) The figures supplement those given elsewhere (figs 1—5 in Disney 1989, figs 6.1d, 8.46a—b in Disney 1994). This species is a little larger than E. abdominalis. The third segment of the arista is at least 0.2 mm long, but is nearer 0.1 mm in E. abdominalis. The apical bristle of the palp is longer than the subapical bristle, but is shorter than the subapical in £. abdominalis. The hairs of the dorsal face of the abdomen are less sharply divided into two distinct series, of long bristle-like hairs and short hairs. There is a more continuous gradation from long to short hairs (cf Figs 1 and 2). A clear difference is that the microtrichia of the upper faces of abdominal segments 2—6 are much larger and fewer in number (Figs 3—4), only being at all dense in the vicinity of the gland opening (g in Fig. 1) at the rear of segment 5. Especially on segment 2, these microtrichia tend to be arranged in irregular transverse rows (as in Fig. 1). The metatarsi of the front and hind legs are more elongated than those of E. abdominalis (Figs 7—10).
Etymology: The species is named in memory of the late Dr J. A. Watson, who gave me valua- ble information and publications on Australian termites.
Holotype 9, AUSTRALIA, New South Wales, about 12 miles west of Braidwood, from nest of Nasutitermes fumigatus, 11. V. 1960 (F. J. Gay) (Australian National Insect Collection, CSIRO, Canberra). 6 Q paratypes, same data as holotype except three deposited in University Museum of Zoology, Cambridge.
Discussion
The achievement of a satisfactory supra-generic classification of the Phoridae is still a long way off, and is the subject of current controversy. The subfamilies Termi- toxeniinae and Thaumatoxeninae are well circumscribed, but their affinities with the rest of the family remain obscure (Disney & Kistner 1992, 1995). The Aenigmatiinae are probably a polyphyletic assemblage reflecting convergent evolution. The largest subfamily, the Metopininae, embraces the probably monophyletic Megaseliini, the almost certainly polyphyletic Beckerinini and the probably paraphyletic Metopinini. The remaining subfamily, the Phorinae, is likewise probably paraphyletic. Brown’s (1992) proposals designed to rectify some of these defects have served to highlight the latter. However, the proposals themselves have precipitated current controversies (Disney 1993, 1994, Brown 1995, Disney 1995a, 1996). In view of this I highlight an interesting feature of the genus Eutermiphora. The palps carry the pre-apical differentiated setae on the external face (Fig. 12), rather than on the internal face like most Phoridae. The patterns of distribution of these setae in different families and genera is reviewed below.
In the Sciadoceridae, the putative sister group of the Phoridae (Cumming et al. 1995), the differentiated setae on the palps are all weak and restricted to the vicinity of the lower margin, but with most being submarginal on the outer face (Fig. 13). In the putative sister group of the Sciadoceridae+ Phoridae, the Ironomyiidae, the setae are larger and more numerous and appear to occur on both faces (Figs 1—2 in McAlpine 1967). This is certainly the case in the supposedly related Lonchopteridae, in which the setae are well developed on both faces of the palp, but are more numerous and stronger on the outer face (Fig. 14). In the presumed basal family of the Cyclorrhapha, the Platypezidae, many genera have no differentiated setae on the
A sibling species of Eutermiphora abdominalis 91
Figs 7—10: Eutermiphora females, anterior faces of tarsi. 7, E. watsoni, front leg; 8, E. abdo- minals, front leg; 9, E. watsoni, hind leg; 10, E. abdominalis, hind leg. (Scale bars = 0.1 mm).
palps. Others, e. g. Agathomyia Verrall, have strongly differentiated setae on the lower margin and inner face of the palp. The related Opetiidae, have no differen- tiated setae on the palps. In the Empidoidea differentiated setae on the outer face of the palp are common, often with the apical setae further differentiated as bristles. The inner face is typically devoid of differentiated setae.
Taken overall, the above outgroup comparisons suggest that the groundplan state in the Cyclorrhapha is possibly with differentiated setae on the both faces of the palp
92 I Jeb Jb IDI Ney
Vee 72
Figs 11—14: 11—12: Eutermiphora females: 11, E. abdominalis, right wing stump; 12, E. watson, right palp. 13—14: Left palps: 13, Sciadocera rufomaculata female; 14, Lonchoptera lutea male. (Scale bars = 0.1 mm).
but more strongly on the outer face, with one or more apical or subapical setae further differentiated as stronger setae or bristles. Thus Lonchoptera possibly represents the groundplan state.
Within the Phoridae every variety of palp setal pattern is encountered, but most frequently the setae are on the inner face with the apical bristles differentiated in varying degrees. The condition reported for Eutermiphora (Fig. 12), therefore, is atypical. However, this pattern is characteristic of all Termitoxeniinae (Disney & Kistner 1995). Furthermore, it occurs in some Metopininae. In most Megaseliini the inner face carries the setae and the apex has differentiated bristles, but in a few species the setae are reduced or lost. In many Metopinini also the pre-apical setae are on the inner face; for example Chonocephalus Wandolleck and Echidnophora Schmitz. In the case of the latter, this observation reinforces the finding that the resemblance between Termitoxeniinae and Echidnophora is due to convergence (Disney 1995b). However, the termitophilous metopinine genera Bolsiusia Schmitz
A sibling species of Eutermiphora abdominalis 93
and Penthaplus Schmitz, like Eutermiphora, have the pre-apical setae on the outer face of the palp, as does the type genus of the Metopinini, Metopina Macquart. It is possible, therefore, that this feature is a synapomorphy that unites these genera with the Termitoxeniinae. However, we do not know the extent to which this feature may have evolved independently more than once, and even symplesiomorphy cannot be ruled out.
These observations on palp setal pattern suggest the hypothesis that Eutermiphora might be phylogenetically related to the Termitoxeniinae. The female's abdominal physogastry, the shortened costa in relation to the shedding of the wing membranes (presumably at the time of entry to the termite host's nest), the lack of axillary bristles on the wing, the reduction in the size and/or density of the microtrichia on the top of the abdomen and the leg chaetotaxy are additional features of resemblance. The mid-mesopleural ridge and the gland opening at the rear of abdominal segment 5 (g in Fig. 1) distinguish Futermiphora and allow its assignment to the Metopininae. The tapered labella of the proboscis (fig. 2 in Disney 1989) are very similar to those of many Termitoxeniinae. However, this feature is probably not a groundplan feature of the latter subfamily (Disney & Kistner 1995) and so this resemblance most likely represents an example of convergent evolution.
The small, subcircular, features clustered around the bases of some abdominal bristles (Fig. 6) invite further investigation. Fresh specimens examined with the scanning electron microscope should establish whether these features are perfora- tions, thus indicating that the associated bristles are probably primitive solutricho- mes that produce a placatory exudate licked up by the host-termite workers (Disney 1995b, Disney & Kistner 1995). So far solutrichome bristles are only known from Termitoxeniinae.
The procurement of the unknown males of Eutermiphora would be likely to reveal whether the majority of the similarities between this metopinine genus and Termi- toxeniinae are due to affinity or convergence.
Acknowledgements
I am gratefulto Dr Leigh Miller (CSIRO, Berrimah, N. T.) for the identification of the termi- tes. Ithank Dr E. G. Matthews (South Australian Museum, Adelaide) for the loan of the holo- type of E. abdominalis and Dr K. Walker (Museum of Victoria, Abbotsford) for his attempts to locate Beyer’s specimens. I thank my cousin John Disney for his hospitality and for intro- ducing me to the locality where I collected the new specimen that prompted this paper. My work on Phoridae is currently funded by a grant from the Leverhulme Trust (London), made to Dr W. A. Foster (Department of Zoology, University of Cambridge) for a Research Associate to work on termitophilous Phoridae, and a grant from the Isaac Newton Trust Trinity College, Cambridge.
Zusammenfassung
Eutermiphora watsoni sp. n. wird von E. abdominalis Lea 1911, der bisher einzigen Art und Typusart der Gattung, unterschieden. Die Weibchen beider Arten leben in Kolonien von Nasu- titermes fumigatus (Brauer 1865) in New South Wales. Die Anordnung der präapikalen Borsten auf den Maxillarpalpen wird als Merkmal erórtert, besonders im Hinblick auf die ungeklárte systematische Stellung der Termitoxeniinae.
94 RENE Disney
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